Материалы декоративные | |||||
Краска для путей эвакуации КМ-0 | |||||
Эмаль акриловая для бетонных полов Olecolor | |||||
Эмаль акриловая глянцевая и матовая различного назначения | |||||
Защитно-красящий состав 3 в 1 WOOD Extra | |||||
Сертификат на ВДК о соответствие ВД-АК | |||||
Сводная ведомость результатов проведения специальной оценки условий труда за 2019 год | |||||
Перечень рекомендуемых мероприятий по улучшению условий труда 2019 год | |||||
Сводная ведомость результатов проведения специальной оценки условий труда за 2018 год | |||||
Перечень рекомендуемых мероприятий по улучшению условий труда за 2018 год | |||||
Сводная ведомость результатов проведения специальной оценки условий труда за 2017 год | |||||
Перечень рекомендуемых мероприятий по улучшению условий труда за 2017 год | |||||
Сводная ведомость результатов проведения специальной оценки условий труда за 2016 год | |||||
Грунт-эмаль акриловая по металлу и бетону | |||||
Эмали КО-811 | |||||
Сертификат соответствия международной экологической системе качества | |||||
Эмали по ржавчине на основе модифицированных алкидных смол | |||||
Грунт — Эмали по ржавчине на основе модифицированных алкидных смол | |||||
Эмали акриловые различного назначения | |||||
Сертификат соответствия международной системе качества | |||||
Грунт-эмаль полиуретановая 2К | |||||
Грунт-эмаль для стальных конструкций | |||||
Грунтовка полиуретановая 2к | |||||
Эмали по ржавчине на основе модифицированных алкидных смол различных цветов графитовая и с металлическим эффектом | |||||
Грунт-эмали по ржавчине на основе алкид-стирола | |||||
ПФ-115 сорт 1 различных цветов по ГОСТу 6465-76 | |||||
Масляные краски МА-15 различных цветов | |||||
Олифа комбинированная по СТО | |||||
Олифа «Оксоль» марки ПВ по ГОСТу 190-78 | |||||
Эмали НЦ-132 П |
1 апреля 1995 года
В 1996 году компания ABC Farben приобрела новую площадку для размещения производственных мощностей размером 1500 квадратных метров. Выпуск продукции был увеличен в 3 раза, а к ассортименту добавились эмали ПФ-1217.
В 1997 году на заводе заработал цех по производству олифы, а также емкостный парк для ее хранения, что позволило предприятию перейти на собственное натуральное, высококачественное сырье для масляных красок. Также было освоено производство собственной тары. Спрос на продукцию ABC Farben рос, равно как и требования потребителей. Руководство приняло решение сделать качественный рывок вперед – превратиться из мелкого местного производителя в одного из основных игроков национального рынка лаков и красок.
В связи с этим, было принято решение построить новый завод, оснастить его в соответствии с международными стандартами и начать выпускать полный ассортимент лакокрасочной продукции.В 1998 году компания приобрела участок земли площадью 6 гектаров для строительства новой производственной площадки на окраине Ольховатки – в поселке Бугаёвка. Проект завода разрабатывался совместно с научно-исследовательским институтом «Синтезкаучукпроект», а также представителями зарубежных производителей оборудования Netzsch, DeVree и ProFarb. Строительство нового предприятия началось в августе. Согласно проекту, оно включало три отдельных цеха, три склада, административное здание, а также необходимые вспомогательные сооружения и инженерные коммуникации.
В 2000 году новая производственная площадка была сдана в эксплуатацию и во втором квартале, к началу строительно-ремонтного сезона, предприятие вышло на проектную мощность. С запуском новой производственной площадки предприятие также увеличило долю собственного сырья — алкидных полуфабрикатных лаков ПФ-060 и ПФ-053, алкидных смол и прочих полуфабрикатов.
На новом заводе каждый цех отвечает за свою стадию производственного процесса.
Цех №1 предназначен для производства лака и олифы. В цехе №2 установлено диспергирующее оборудование для выпуска белых баз А, B и C для алкидных эмалей, грунт-эмалей и масляных красок. В цехе №3 базы смешиваются с колорантами, и изготавливаются цветные краски и эмали, которые затем фасуются в потребительскую упаковку и промышленную тару. Такая последовательная технология, позаимствованная у западных предприятий, не только помогает получить более качественный продукт, но и повышает гибкость производства, позволяет оперативно обрабатывать заявки и подстраиваться под потребительский спрос.
Каждый цех имеет свою лабораторию, осуществляющую контроль входящего сырья и готовой продукции, а за общий контроль качества отвечает центральная лаборатория.
В 2001 году на заводе АВС Farben начали осваивать выпуск воднодисперсионных материалов и клея ПВА. Центральная лаборатория была укомплектована новым оборудованием для разработки собственных рецептур. На завод пришли новые кадры – опытные технологи, профессионалы в области лакокрасочного производства. Специалистов отбирали по всей стране.
Сотрудники лаборатории работали над новыми видами продукции: клеевыми и латексными шпатлевками, водно-дисперсионными красками для стен, потолков и фасадов.
Для повышения квалификации технологи и сотрудники лаборатории, занимающиеся воднодисперсионной группой, прошли обучение в ведущих учебных центрах России, а также профессиональную стажировку в Финляндии и Германии.
В 2001 году у компании появилась первая торговая марка – Olecolor, в ассортиментной линейке которой были представлены алкидные грунтовки, алкидные эмали и нитроэмали, чуть позже дополненные группой водно-дисперсионных материалов, изготавливаемых по собственным рецептурам.
В 2004 году компания перешла на новый виток развития: в Воронеже был основан Торговый Дом, специалисты которого разработали и внедрили современную систему дистрибьюции и продвижения продукции. География сбыта ABC Farben начала расти в геометрической прогрессии. В связи с этим, в последующие годы предприятие продолжило динамично развиваться, постоянно наращивая производственные мощности и объемы выпуска продукции.
В 2004 году была существенно увеличена производительность цеха лаков: к 3 существующим реакторам добавилось 5 новых, а возможности выпуска продукции выросли до 80 тонн в сутки. Для сотрудников были построены современные специализированные бытовые корпуса с раздевалками и душевыми. В то же время на предприятии были введены корпоративные стандарты работы ABC Farben, а всем рабочим выдали специальную рабочую форму с фирменной символикой.
В 2005 году в 2 раза увеличились производственные мощности по выпуску олифы за счет добавления еще одной установки, а также были введены в эксплуатацию 2 лакохранилища объемом 2000 кубических метров каждое. Это позволило обеспечить бесперебойность производственного процесса.
В 2006 году в 3 раза выросла производительность цеха №2 (производство белых баз), благодаря приобретению новой линии Netzsch, а вслед за этим в цехе №3 (фасовка и розлив алкидных материалов) была увеличена производственная мощность линии фасовки DeVree, которая теперь способна выпускать более пятнадцати тонн продукции в час.
Также в 2006 году в связи с развитием спроса на лакокрасочные материалы класса «премиум» на свет появилась еще одна торговая марка – Ticiana.
В 2007 году был введен в эксплуатацию новый складской комплекс класса «А» для готовой продукции с целью сокращения сроков комплектации заказов до 1-2 дней. Его площадь составляет более 3500 тысяч метров.
Также в 2007 году было принято решение о строительстве цеха №4, предназначенного для выпуска воднодисперсионной продукции: акриловых шпатлевок, грунтовок, красок и эмалей. В 2008 год цех был успешно сдан в эксплуатацию.
С 2009 года компания предлагает своим покупателям инструменты для строительных и отделочных работ под марками «УправДом» и «Петрович», а также инвентарь для сада и огорода под маркой «Дарко» и серию навесных замков «Квадра». ABC Farben делает ставку на широкий ассортимент продукции и оптимальное соотношение цены и качества.
В связи с открытием нового направления компанией ABC Farben были введены в эксплуатацию новые современные склады общей площадью 4 500 квадратных метров. В настоящий момент ведется дальнейшее расширение складских площадей, и в своем окончательном виде складской комплекс будет включать почти 7000 квадратных метров складских помещений класса «А» и «В».
Также в 2009 году руководством компании было принято решение перейти на платформу SAP ERP – признанного мирового лидера в сфере систем управления предприятием. Внедрение платформы SAP было разбито на несколько этапов и было завершено в 2011 году. Это нововведение позволило ABC Farben перейти на новый уровень поддержки процессов планирования, управления качеством, и дистрибьюции, оптимизировать все бизнес-процессы внутри компании и повысить эффективность работы в целом.
В 2009 году мировая общественность столкнулась с финансово-экономическим кризисом, который коснулся всех отраслей экономики. Не обошел он стороной и строительную индустрию. Компании, занятые в строительстве, пытались найти эффективные решения, чтобы удержать свои позиции на рынке. В компании ABC Farben было принято решение расширить ассортимент лакокрасочных материалов за счет продукции экономичного сегмента. Так появилась новинка 2009 года – торговая марка «УправДом». Основная задача при разработке марки «УправДом» заключалась в производстве максимально качественной продукции при минимальной стоимости. В ассортимент марки вошли наиболее востребованные виды лакокрасочных материалов: грунтовки, шпатлевки, акриловые краски, алкидные эмали, клеи, олифа. В сложившихся условиях новая продукция оказалась весьма востребована и быстро нашла своего потребителя.
В 2010 году компания ABC Farben отметила свое 15-летие. Возраст компании ABC Farben – свидетельство надежности и стабильности предприятия на рынке.
В 2011 году в ассортиментном портфеле компании ABC Farben появился новый продукт – лакокрасочные материалы под торговой маркой Farbitex. Исследования потребностей покупателя, многократные тестирования образцов товаров-аналогов различных производителей позволили специалистам компании разработать продукт, полностью отвечающий веяниям времени и требованиям целевой аудитории. Под торговой маркой Farbitex выпускаются наиболее востребованные рынком лакокрасочные материалы.
Также в 2011 году ассортимент товаров для дома и дачи компании АВС Farben расширился новой линейкой электротоваров. Появление энергосберегающих ламп торговых марок «Управдом» и «Карат» явилось первым шагом на пути к поставкам на рынок широкого ряда современного электроустановочного оборудования. Разработка люминесцентных ламп осуществлялась на основе многолетнего опыта в данной сфере крупных европейских производителей, благодаря чему лампы ТМ «Управдом» и «Карат» сочетают в себе все новейшие технологии производства энергосберегающей продукции. В данной группе товаров представлены разные по мощности, типу цоколя и цвету света лампы: спирали, полуспирали, дуги, рефлекторы, а также лампы декоративного направления.
В 2012 году Компания ABC Farben принимает участие в новосибирской международной выставке, где выставлялись крупные российские производители из Германии, Турции, Кореи, Италии. Продолжила выставочную эстафету в Красноярске, где прошла XX специализированная выставка «Строительство и архитектура». Компания ABC Farben также была награждена дипломом за участие в ежегодной международной выставке MOSBUILD 2012, которая прошла в Москве и собрала более 100 000 специалистов строительной отрасли со всего мира. В Краснодаре состоялся международный строительный форум YugBuild, где встретились свыше 14 000 профессионалов стройиндустрии юга России, компания ABC Farben также приняла участие и была отмечена Почетной грамотой.
В 2013 году ABC Farben расширяет свой ассортиментный портфель торговыми марками «Farbitex PROFI» и «Ticiana Deluxe». Продукция торговой марки «Farbitex PROFI» — это серия лакокрасочных и ремонтно-восстановительных материалов общего и специального назначения для профессионалов. Торговая марка «Ticiana Deluxe» является суббрендом родительского бренда «Ticiana». Новая торговая марка направлена на прогрессивных потребителей, ценящих стиль, индивидуальность, престиж. Ассортиментный портфель бренда — продукты для элитной декоративной отделки интерьеров и экстерьеров. Концепция бренда «Ticiana Deluxe» основана на реализации продукции посредством формата дизайн-студии.
В 2014 году новым этапом истории развития компании ABC Farben стало открытие нового завода в г. Магнитогорск. В марте 2014 года производственная площадка была сдана в эксплуатацию. К началу строительного ремонтного сезона предприятие вышло на проектную мощность — 15 000 тысяч тонн водно-дисперсионной продукции в год. Также в формате торговой марки «Farbitex PROFI» выпущена новая линейка продуктов по защите древесины. В ассортимент вошли наиболее востребованные средства деревозащиты: защитно-красящие составы, лаки различного назначения, шпатлевка по дереву, нитролаки.
2015 год ознаменовался запуском нового цеха по производству битумных мастик и стартом франчайзингового проекта сети магазинов «Азбука красок», которые реализуют продукцию в формате супермаркета. Ассортимент магазина составляют лакокрасочные материалы на любой вкус и достаток, а также инструменты, лампы и прочие товары народного потребления.
Сегодня ABC Farben – это крупнейшее предприятие, входящее в пятерку крупнейших российских производителей лакокрасочных материалов, это экологически чистые продукты, использование новейших достижений научно-технического прогресса в своей области и, конечно же, разветвлённая дистрибьюторская сеть — это основа успеха компании в настоящем и то, что позволяет компании уверенно смотреть в будущее.
Код продукта: 00312013
Оставить отзывЭтот товар временно недоступен для заказа
В избранном В избранное
Шпатлевка акриловая для наружных и внутренних работ, предназначена для выравнивания и исправления дефектов на кирпичных, бетонных, оштукатуренных, гипсовых и других минеральных поверхностях. Подходит для внутренней отделки помещений с повышенной влажностью.
Свойства продукта
Образует прочное, гладкое, матовое и влагостойкое покрытие. Хорошо скрывает мелкие дефекты поверхности толщиной 1- 3 мм. Легко наносится и имеет минимальную усадку. Хорошо шлифуется и не забивает наждачную бумагу. Разбавляется водой. Не имеет резкого запаха и абсолютно не токсична.
Характеристики
Тип | шпаклёвка |
Назначение | для внутренних работ, для наружных работ |
Тип поверхности | бетон, штукатурка, кирпич |
Цвет | белый |
Степень глянца | матовый |
Расход в один слой | 1 кг/м² |
Вес | 13 кг |
Время высыхания | 24 ч |
Основа | акрил |
Инструмент для нанесения | металлический/пластмассовый шпатель |
Производитель | ABC Farben |
Характеристики и изображения товара Шпаклёвка ABC Farben Farbitex Profi Nivelare 13kg приведены в ознакомительных целях и могут отличаться от реальных. Рекомендуем при покупке уточнять наличие желаемых функций и характеристик.
У этого товара еще нет отзывов. Будьте первым кто его оставит
Написать отзыв
Вам может пригодиться
Просмотренные товары
2 места, Стандарт, Изотермический фургон + ГБО 2.7 (149.6), MT5, Полный, 2 места | 2021 | 2 | 2.7 | 149.6 | Механика (MT5) | Полный | 1 166 900 ₽ | 206 690 ₽ | — | Купить | |
3 места, Стандарт, Изотермический фургон 2. 7 (149.6), MT5, Задний, 3 места | 2021 | 3 | 2.7 | 149.6 | Механика (MT5) | Задний | 1 063 900 ₽ | 100 000 ₽ | — | Купить | |
3 места, Стандарт, Изотермический фургон 2.7 (149.6), MT5, Задний, 3 места | 2021 | 3 | 2.7 | 149.6 | Механика (MT5) | Задний | 1 093 900 ₽ | 100 000 ₽ | — | Купить | |
3 места, Стандарт, Изотермический фургон + ГБО 2.7 (149.6), MT5, Задний, 3 места | 2021 | 3 | 2.7 | 149.6 | Механика (MT5) | Задний | 1 108 900 ₽ | 100 000 ₽ | — | Купить | |
3 места, Комфорт, Изотермический фургон 2.7 (149.6), MT5, Задний, 3 места | 2021 | 3 | 2. 7 | 149.6 | Механика (MT5) | Задний | 1 119 900 ₽ | 100 000 ₽ | — | Купить | |
2 места, Стандарт, Изотермический фургон 2.7 (149.6), MT5, Полный, 2 места | 2021 | 2 | 2.7 | 149.6 | Механика (MT5) | Полный | 1 121 900 ₽ | 100 000 ₽ | — | Купить | |
3 места, Стандарт, Изотермический фургон + ГБО 2.7 (149.6), MT5, Задний, 3 места | 2021 | 3 | 2.7 | 149.6 | Механика (MT5) | Задний | 1 138 900 ₽ | 100 000 ₽ | — | Купить | |
2 места, Стандарт без ABC, Изотермический фургон 2.7 (149.6), MT5, Полный, 2 места | 2021 | 2 | 2. 7 | 149.6 | Механика (MT5) | Полный | 1 144 400 ₽ | 100 000 ₽ | — | Купить | |
2 места, Стандарт, Изотермический фургон 2.7 (149.6), MT5, Полный, 2 места | 2021 | 2 | 2.7 | 149.6 | Механика (MT5) | Полный | 1 151 900 ₽ | 100 000 ₽ | — | Купить | |
2 места, Стандарт без ABC, Изотермич. фургон + ГБО 2.7 (149.6), MT5, Полный, 2 места | 2021 | 2 | 2.7 | 149.6 | Механика (MT5) | Полный | 1 159 400 ₽ | 100 000 ₽ | — | Купить | |
3 места, Комфорт, Изотермический фургон + ГБО 2.7 (149.6), MT5, Задний, 3 места | 2021 | 3 | 2.7 | 149.6 | Механика (MT5) | Задний | 1 164 900 ₽ | 100 000 ₽ | — | Купить | |
2 места, Комфорт, Изотермический фургон + ГБО 2.7 (149.6), MT5, Полный, 2 места | 2021 | 2 | 2.7 | 149.6 | Механика (MT5) | Полный | 1 177 900 ₽ | 100 000 ₽ | — | Купить | |
2 места, Стандарт, Изотермический фургон + ГБО 2.7 (149.6), MT5, Полный, 2 места | 2021 | 2 | 2.7 | 149.6 | Механика (MT5) | Полный | 1 196 900 ₽ | 100 000 ₽ | — | Купить | |
2 места, Комфорт, Изотермический фургон 2.7 (149.6), MT5, Полный, 2 места | 2021 | 2 | 2.7 | 149.6 | Механика (MT5) | Полный | 1 207 900 ₽ | 100 000 ₽ | — | Купить | |
2 места, Комфорт, Изотермический фургон + ГБО 2.7 (149.6), MT5, Полный, 2 места | 2021 | 2 | 2.7 | 149.6 | Механика (MT5) | Полный | 1 252 900 ₽ | 100 000 ₽ | — | Купить |
Код товара: 743140
Наличие на складег. Новосибирск ул. Никитина 11
Нет
г. Новосибирск ул. Семьи Шамшиных 58
Нет
г. Томск ул. 79 Гвардейской Дивизии 3
1
г. Томск ул. Елизаровых 46/1
Нет
г. Томск ул. Розы Люксембург 141а
Нет
г. Томск ул. Иркутский тракт 142/3
Нет
г. Северск пр. Коммунистический 161
Нет
Бесплатная доставка по Томску и Новосибирску, условия.
“Анализ – это не расчленение и выдумывание:
это структурирование и продумывание”.
Александр Круглов
ABC-анализ — это мощный маркетинговый инструмент, который способен дать ответы на целый ряд вопросов, связанных с ассортиментом, товарными запасами, трудовыми ресурсами, поставщиками и клиентами и т.п. Технологию ABC-анализа используют даже для оценки персонала. Но в классическом понимании ABC-анализ — это инструмент для определения наиболее важных ресурсов компании на основе объемов продаж или прибыли.
ABC-анализ чаще всего используют для определения:
В основе ABC-анализа лежит “Принцип Парето”: 20% ресурсов приносят 80% прибыли. Именно этот вид анализа позволяет выделить те самые группы товаров, ресурсов, клиентов, поставщиков и т.п., которые и приносят компании основную прибыль.
Группы товаров:
Группа А — эти товары приносят 80% прибыли компании и при этом составляют не более 20% в ассортиментом портфеле. Они наиболее востребованы. От уровня продаж этих товаров зависит благополучие всей компании, т.к. при малейшем падении объемов продаж этой группы товаров произойдет значительное снижение прибыльности всей компании.
Группе товаров А необходимо уделять наибольшее внимание и максимально жестко следить за их конкурентоспособностью.
Группа В — эти товары приносят 15% прибыли компании и составляют 20-35% в ассортиментом портфеле компании. Они отличаются стабильностью и не требуют значительных инвестиций.
Группа С — эти товары приносят всего 5% прибыли компании и составляют 50-60% товарного ассортимента. С товарами из этой группы можно “расстаться” навсегда или оптимизировать их производство.
Провести АВС-анализ можно с помощью EXLS таблицы. Для этого необходимо внести в таблицу весь товарный ассортимент, который вы планируете проанализировать.
К примеру, вам необходимо выявить группы товаров, которые приносят наибольшую прибыль компании. После того как вы создали таблицу с товарами, отсортируйте ее по убыванию прибыли, которую приносит каждая из товарных позиций.
Затем определите долю каждой товарной позиции в объеме прибыли в процентах. Для этого необходимо прибыль отдельного товара разделить на общую сумму прибыли и выразить в процентах.
А затем определите суммарное процентное соотношение, накопительный вклад каждой товарной позиции, начиная с верхней строки.
Теперь необходимо выделить товарные группы. Все что в границе до 80% – это группа А, от 80% до 95% — это группа В и все, что ниже — это группа С.
Что именно вы будете анализировать и с какой целью зависит только от вас. Метод ABC анализа универсален и может быть использован для анализа практически любого ресурса компании.
Как избежать ошибок при проведении АВС-анализа?
Ошибка № 1. После того как вы получили матрицу товаров с ранжированием по группам, проведите анализ товаров группы С. Важно понимать, по какой причине товар оказался в этой группе. Нередки случаи, когда новый перспективный товар оказывается в группе “на вылет”. Это происходит из-за математичности метода, который не может учитывать стратегию развития вашей компании.
Ошибка № 2. Определите цель проведения анализа. АВС-анализ не является самоцелью. Это всего лишь инструмент, а цель его использования зависит только от вас. Возможно, вам необходимо выявить группы товаров, которые приносят наибольшую прибыль компании или наиболее эффективный цех на основе объемов производства.
Ошибка № 3. Не стоит проводить АВС-анализ ежемесячно. При анализе краткосрочного периода очень легко получить ошибочные данные. Идеальный период для проведения анализа — квартал.
Ошибка № 4. Не опирайтесь только на те данные, которые вы получили при анализе последнего периода. Сравнивайте данные, полученные в прошлом квартале с данными в текущем, данные за квартал в текущем году и в аналогичном периоде, но прошлого года. Это позволит вам увидеть более полную картину.
А ещё проще не совершать ошибок в работе с клиентами – закончить курс “Директор по маркетингу” 😉
Ботанические полисахариды обладают разнообразными терапевтическими свойствами, и считается, что этот эффект связан с модуляцией врожденного иммунитета, а точнее функции макрофагов (Venkatalakshmi et al., 2016). Макрофаги являются долгоживущими клеточными эффекторами врожденного иммунитета и основным типом клеток, участвующих в стимуляции адаптивного иммунного ответа (Wang et al., 2013). Это первые клетки, которые вступают в контакт с микроорганизмами-захватчиками и необходимы для их устранения (Li et al., 2015). Процесс клиренса частично начинается с TLR моноцитов, которые связываются с белком, лектином, липопротеином и полисахаридом патогенов. Впоследствии TLR запускают нижестоящий каскад, который в конечном итоге активирует фактор транскрипции, NF-κB, который запускает серию реакций, последовательно продуцирующих провоспалительные цитокины и хемокины. Такое поведение индуцирует как Т-, так и В-лимфоциты, инициирующие адаптивный иммунный ответ (Duque and Descoteaux, 2014).Следовательно, агенты, которые обладают способностью усиливать функцию макрофагов, очень важны для улучшения общего иммунитета, особенно для тех, кто страдает от рака, СПИДа и аутоиммунных заболеваний (Lee et al., 2013). Таким образом, макрофаги считаются идеальной моделью для научной оценки иммуностимулирующего агента. В этой заметке, будучи наиболее распространенными биоактивными полимерами, полисахариды предоставляют уникальную возможность для открытия новых терапевтических средств (Venkatalakshmi et al., 2016).
Кроме того, многие исследования также показывают, что полисахариды играют важную роль в качестве акцепторов свободных радикалов и антиоксидантов для предотвращения окислительного повреждения (Khatua et al., 2013). Следовательно, повреждение тканей, опосредованное окислителями, представляет опасность для иммунной системы, чувствительной к стрессу, вызванному свободными радикалами. Иммунные клетки в значительной степени полагаются на связанные с мембраной рецепторы для эффективной работы посредством межклеточной коммуникации. Однако эти клеточные мембраны, богатые полиненасыщенными жирными кислотами, наиболее восприимчивы к свободным радикалам, и атака может привести к изменению внутриклеточной передачи сигналов (Hughes, 1999). На этом этапе антиоксиданты играют фундаментальную роль в поддержании оптимального здоровья, поскольку они представляют собой первую линию защиты от окислительного повреждения, вызванного улавливанием радикалов (Khatua et al., 2013). Напротив, может наблюдаться интенсивное подавление иммунных функций из-за недостаточного статуса пищевых антиоксидантов, что увеличивает риск инфекции (Puertollano et al., 2011).
В этом сценарии полисахариды грибов были оценены в рационе человека и традиционной медицине, особенно в Дальней Азии. Однако в последнее время их популярность возросла из-за растущего осознания их терапевтических свойств, подтвержденного научными исследованиями (Giavasis, 2014). Некоторым из таких биополимеров, особенно β-глюкану, приписывают чудодейственную способность продлевать жизнь и укреплять иммунную систему.Исследования показали, что эти иммуномодуляторы могут размножаться и активировать компоненты врожденного иммунитета, включая макрофаги (Akramienė et al., 2007). Кроме того, эти природные полимеры глюкозы также были одобрены для улавливания свободных радикалов и уменьшения количества компонентов (Khatua et al., 2013). Таким образом, съедобные грибы и их полисахариды в настоящее время признаны функциональными пищевыми ингредиентами и считаются улучшающими общее состояние здоровья за счет иммуностимулирующего, а также антиоксидантного потенциала (Akramienė et al., 2007; Влатка и др., 2010).
Несмотря на эффекты, информации о химическом составе и потенциальной пользе для здоровья некоторых макрогрибов мало, даже сегодня. Одним из таких менее изученных таксонов является Russula senecis , который недавно был задокументирован как новый представитель макрогрибной флоры Западной Бенгалии, Индия. Интересно, что этот образец также стал сезонным продуктом, способствующим укреплению здоровья, среди местных коренных народов, что указывает на безопасность для употребления в пищу человеком (Khatua et al., 2015). Недавно в нашем предыдущем исследовании была установлена лечебная активность полисахарида из грибов, хотя в качестве экстрагирующего растворителя использовался 10% раствор NaOH (Khatua, Acharya, 2017).Тем не менее, исследования необходимо проводить с упором на традиционный гидротермальный процесс, поскольку грибы традиционно употребляют в пищу, готовя их в воде. Таким образом, настоящая работа была разработана, чтобы дать представление о химическом составе полисахаридов из R. senecis , полученных кипячением с обратным холодильником нагретой воды. Кроме того, композиция была оценена на предмет предполагаемой терапевтической активности, а именно антиоксидантного и иммуностимулирующего действия, чтобы предсказать полезность народного гриба.
2-дезокси- D -рибоза, хлорид железа, перекись водорода, L -метионин, тиобарбитуровая кислота, нитросинтетический тетразолий (NBT), феррозин, рибофлавин, трихлоруксусная кислота, феррицианид калия, DPPH, ABTS, трифторуксусная кислота боргидрид, персульфат натрия, молибдат аммония, толуол, пиридин, дихлорметан, аскорбиновая кислота, этилендиаминтетрауксусная кислота (EDTA), бутилированный гидроксианизол (BHA), галловая кислота, бычий сывороточный альбумин (BSA), липополисахарид (LPS) (экстракция из 026: B6) и моносахариды были закуплены у Sigma Chemical Co.(Сент-Луис, Миссури, США). Толуол, дихлорметан, хлороформ были чистыми для ВЭЖХ, а моносахариды были особо чистыми. Использовали набор грибов-β-глюканов от Megazyme Institute Wicklow, Ирландия. Были приобретены модифицированная по Дульбекко среда Игла (DMEM), сульфаниламид, нейтральный красный, дигидрохлорид нафтилэтилендиамина, конго красный, фосфорная кислота, 4 ‘, 6-диамидино-2-фенилиндол (DAPI), 2′, 7’-дихлорфлуоресцина диацетат (DCFDA) из Химедиа, Мумбаи, Индия. Фетальная бычья сыворотка (FBS) и водорастворимый тетразолий (WST) были приобретены у Takara Bio Inc, Япония и Invitrogen, Carlsbad, CA, США, соответственно.Амфотерицин B и PenStrep использовали от MP Biomedicals, Санта-Ана, Калифорния, США. Набор для двухэтапной обратной транскриптазы-ПЦР (RT-PCR) от MP Biomedicals, Mumbai, India, использовали для синтеза кДНК из выделенной РНК.
Плодовые тела R. senecis были собраны в естественной среде обитания Западной Бенгалии в июле. Идентичность базидиома была подтверждена на основании макро- и микроморфологических исследований, сопровождаемых филогенетическим анализом, как описано в нашей предыдущей публикации (Khatua et al., 2015). Репрезентативный ваучерный образец (номер доступа: CUH AM102) был депонирован в гербарии того же факультета Университета Калькутты.
Высушенные и измельченные в порошок фруктовые тела замачивали этанолом (приблизительно 10 объемов) в течение ночи для удаления растворимых в спирте компонентов, а отфильтрованный остаток повторно экстрагировали этанолом. Осушенный воздухом фильтрат суспендировали и кипятили с обратным холодильником с дистиллированной водой в течение 7 часов.Затем экстракт фильтровали через нейлоновую ткань и лиофилизировали до концентрирования. Для сбора полисахарида добавляли четыре объема абсолютного этанола и инкубировали в течение ночи при 4 ° C. После центрифугирования (11000 об / мин в течение 10 минут при 4 ° C) гранулы повторно растворяли в воде, чтобы получить фракцию сырого полисахарида, которая хорошо растворилась в воде. Осадки, осажденные спиртом, извлекали центрифугированием с последующей промывкой этанолом и ацетоном. Фракция сырого полисахарида была обозначена как рузенан и хранилась в янтарных контейнерах в сухом состоянии до анализа (Khatua et al., 2017а).
Общее содержание сахара измеряли фенол-сернокислотным методом с использованием глюкозы в качестве стандарта, и результаты выражали в граммах эквивалентов глюкозы / 100 г сухого полисахарида. α-глюкан, β-глюкан и общий глюкан оценивали с использованием набора для анализа β-глюкана грибов и дрожжей в соответствии с руководством. Концентрацию белка определяли с использованием метода, описанного реактивом Брэдфорда, и количество выражали в граммах эквивалентов BSA / 100 г сухого полисахарида.Кроме того, русенан исследовали с помощью FT-IR (PerkinElmer Inc., Spectrum 100, Waltham, MA, США) в диапазоне частот 400–4000 см –1 . Далее молекулярный состав анализировали с помощью ВЭТСХ, а также ГХ-МС (Хатуа и Ачарья, 2016).
Был проведен анализ общей антиоксидантной способности, и активность была выражена как количество эквивалентов BHA (Prieto et al., 1999). Кроме того, активность рузенана по улавливанию супероксидных радикалов (200-600 мкг / мл) оценивали на основе системы рибофлавин-свет-NBT с использованием 96-луночного планшета, а оптическую плотность измеряли с помощью устройства для считывания микропланшетов (Bio-Rad iMark TM Microplate Reader, США. ) (Хатуа и др., 2017б). Метод, описанный Halliwell et al. (1987) проследили за определением активности по улавливанию гидроксильных радикалов (OH , ). Радикалы генерировались реакцией Фентона в присутствии различных концентраций (200-500 мкг / мл) рузенана, а оптическую плотность измеряли при 535 нм. Кроме того, антиоксидантную активность также оценивали с использованием микротитровального планшета, адаптирующего радикал DPPH. Раствор радикала в ДМСО (0,1 мМ) оценивали в сравнении с различными концентрациями сырого полисахарида (500-1500 мкг / мл), и оптическую плотность определяли при 517 нм.Анализ активности по улавливанию радикалов ABTS также проводился с использованием диапазона фракций (100–1000 мкг / мл) (Khatua et al., 2017b). Кроме того, потенциал рузенана (100–500 мкг / мл) также оценивали с помощью модельной системы β-каротина линолеата (Dapkevicius et al., 1998). Кроме того, способность исследуемого экстракта хелатировать ион двухвалентного железа определялась с использованием различных концентраций рузенана (50–200 мкг / мл). Также был рассмотрен модифицированный метод снижения мощности. Различные дозы экстракта (2000–4000 мкг / мл) смешивали с 60 мкл реакционной смеси, и оптическую плотность измеряли при 750 нм (Khatua et al., 2017б). BHA считали стандартом в анализах улавливания супероксида, гидроксила и DPPH радикала, снижая мощность наряду с ингибированием анализа отбеливания β-каротина; в то время как EDTA был принят в качестве положительного контроля хелатирующей способности метода с ионами двухвалентного железа. Концентрация образца, обеспечивающая 50% антиоксидантной активности или 0,5 абсорбции в анализе снижающей мощности, была рассчитана из графиков процентов антиоксидантной активности и принята как значение EC 50 .
RAW 264.7 мышиных макрофагов были приобретены в NCCS, Пуна, Индия, и содержались в DMEM с добавлением 10% (об. / Об.) FBS, 0,5% (об. / Об.) PenStrep (5000 МЕ / мл пенициллина и 5 мг / мл стрептомицина) и 0,25% (об. / об.) амфотерицин B (250 мкг / мл). Первоначально около 3000 клеток высевали в 96-луночный планшет в течение ночи, рузенан в различных дозах (50, 100 и 200 мкг / мл) добавляли к 200 мкл реакционной смеси и инкубировали в течение различных интервалов времени. Затем добавляли 20 мкл реагента WST и измеряли оптическую плотность при 450 нм.Для исследования влияния на пиноцитарную активность реакционную смесь после определенного периода инкубации заменяли 100 мкл DMEM, содержащего 0,07% (мас. / Об.) Нейтрального красного, с последующей промывкой клеток. Затем добавляли 100 мкл реагента клеточного лизата (этанол: 0,01% уксусная кислота = 1: 1) и через 2 часа измеряли оптическую плотность при 575 нм. Кроме того, высвобождение NO оценивали путем добавления 100 мкл реагента Грисса в 100 мкл реагента, и отмечали поглощение при 545 нм. Кроме того, изменение морфологии клеток наблюдали после 24-часовой обработки под инвертированным микроскопом (FLoid ® Cell Imaging Station, Life Technologies, Карлсбад, Калифорния, США) с использованием красителя DAPI.Кроме того, влияние на внутриклеточную продукцию ROS измеряли с помощью проточной цитометрии (BD Bioscience, Сан-Хосе, Калифорния, США) с использованием DCFDA и анализировали с помощью программного обеспечения BD CellQuest Pro. Во всех наборах экспериментов в качестве положительного контроля использовали ЛПС в концентрации 5 мкг / мл (Khatua, Acharya, 2017; Khatua et al., 2017a).
RAW (6 × 10 5 клеток / лунку) обрабатывали различными концентрациями рузенана и оставляли для инкубации в течение 24 часов.Далее, РНК экстрагировали с использованием реагента TRIzol, и проводили обратную транскрипцию с 1 мкг общей РНК с использованием RT- и GO Mastermix в соответствии с инструкциями производителя. ПЦР (Thermo Fisher Scientific Incorporated, США) проводили с использованием праймеров для генов TLR-4, TLR-2, NF-κB, IκB-α, COX-2, iNOS, TNF-α и IFN-γ при различной температуре отжига. с β-актином в качестве внутреннего контроля (таблица 1). Для каждого геля применялась программа ImageJ для количественного измерения интенсивности полос.
ТАБЛИЦА 1. Последовательности праймеров, используемые для определения иммуностимулирующего эффекта.
IBM SPSS Statistics для Windows, версия 23.0. (IBM Corp., Армонк, Нью-Йорк, США) использовали в качестве программного обеспечения для статистического анализа. Эксперименты проводились по крайней мере в трех экземплярах, и результаты представлены в виде среднего значения ± стандартное отклонение (SD). Односторонний дисперсионный анализ (ANOVA) с последующим апостериорным тестом Тьюки был использован для оценки значимых различий ( p <0.05).
Неочищенный полисахарид, рузенан, был получен из R. senecis после кипячения с обратным холодильником в горячей воде и осаждения этанолом, который имел вид беловатого порошка и хорошо растворился в воде. Выход экстракции был определен как 4,42 ± 0,26% от сухой массы, что превышает эффективность выщелачивания Russula virescens (Sun et al., 2010), Russula alatoreticula (Khatua et al., 2017a), Macrocybe gigantea (Khatua, Acharya, 2016) и Termitomyces eurhizus (Chatterjee et al., 2013). Однако процент извлечения русенана оказался в 2,2 раза ниже, чем у фракции, выделенной щелочным растворителем из R. senecis (Khatua, Acharya, 2017).
Последующая характеристика четко показала, что приготовленная фракция была богата полисахаридами, так как общее содержание углеводов составляло 39,79 ± 4,52 г / 100 г сухого полисахарида, а количество белка составляло 4.01 ± 0,06 г / 100 г сухого полисахарида. Кроме того, было обнаружено абсолютное преобладание β-глюкана в рузенане, поскольку общее содержание глюкана, β-глюкана и α-глюкана составляло 15,63 ± 2,49, 12,11 ± 0,28 и 3,52 ± 2,51 г / 100 г сухого полисахарида, соответственно. Сравнительное исследование с предыдущей литературой показало, что R. senecis может состоять из большего количества углеводов, чем R. alatoreticula (Khatua et al., 2017a), T. eurhizus (Chatterjee et al., 2013) и Schizophyllum commune (Klaus et al., 2011). Кроме того, было обнаружено, что содержание β-глюкана, а также α-глюкана выше, чем у Pleurotus florida (Saha et al., 2013), в то время как содержание белка было лучше, чем у экстракта горячей воды из Ganoderma lucidum и Agaricus bisporus (Kozarski et al., 2011).
FT-IR был выполнен здесь для идентификации функциональных групп, присутствующих в рузенане (рис. 1A). Как описано в предыдущей литературе, наличие сильной и широкой полосы поглощения на 3433.1 см. -1 был обусловлен растяжением -ОН, что указывает на сильную меж- и внутримолекулярную связь между полисахаридными цепями. Пик при 2921,5 см. -1 можно отнести к валентным колебаниям связи C – H в сахарном кольце. Сигнал при 1631,1 см. -1 соответствует карбонильной группе группы карбоновой кислоты. Поглощение на 1402,2 см. -1 представляет собой деформационное колебание группы ОН в плоскости. Пик при 1243,3 см -1 указывает на присутствие о-ацетильных групп.Полоса при 1046,3 см -1 была обусловлена несимметричным растяжением C-O-C и подтвердила присутствие соединения маннопиранозы. Кроме того, на наличие β-гликозидных связей указывало характеристическое поглощение при 883,6 см -1 . Пик на высоте 720,8 см -1 подтвердил наличие маннозы в рузенане (Сыница и др., 2009; Клаус и др., 2011; Баяр и др., 2016; Прити и Мэри, 2016; Ши и др., 2016). В целом спектр показал высокое поглощение при волновых числах 3400 и 1200-800 см -1 , которые были характерны для полисахарида.Исходя из результатов, можно было предположить, что рузенан в основном состоит из сахарных единиц в β-конфигурации, а также небольшого количества липидов и белков.
РИСУНОК 1. Структурные и молекулярные характеристики сырого полисахарида, рузенана, выделенного из Russula senecis. (A) FT-IR спектр (B) Идентификация моносахаридов в гидролизованных полисахаридах с помощью HPTLC, Дорожки: 1: L -арабиноза, 2: D -фруктоза, 3: D -фукоза, 4: D -галактоза, 5: рузенан, 6: D -глюкоза, 7: D -манноза, 8: D -рамноза, 9: D -ксилоза. (C) ГХ-МС хроматограмма дериватизированного рузенана (время удерживания D -ксилозы: 12,8 мин, D -хамнозы: 13,2 мин, D -маннозы: 16,6 мин, D -глюкозы: 16,7 мин, D -галактоза: 16,8 мин).
Самым популярным методом определения структуры ядра полисахарида является ТСХ, за которой следует орцинол-H 2 SO 4 спрей, поскольку они приобретают определенный цвет после различной реакции с гексозой и пентозным сахаром (Ruthes et al., 2015). В настоящем исследовании типы моносахаридов в рузенане были предварительно проанализированы с помощью ВЭТСХ, и было обнаружено, что хроматограмма состоит из четырех моносахаридов, таких как галактоза, глюкоза, манноза и ксилоза (рис. 1B). Результат был дополнительно подтвержден с помощью ГХ-МС, и для этого полярные углеводы были преобразованы в неполярные компоненты посредством гидролиза, восстановления, а также ацетилирования. Профиль отпечатка пальца был обнаружен как очень похожий на предыдущий результат, за исключением рамнозы, которая не была обнаружена на хроматограмме ТСХ, поскольку она присутствовала в виде следа.Таким образом, было обнаружено, что рузенан состоит из пяти типов мономеров, таких как ксилоза, рамноза, манноза, глюкоза и галактоза, представленных в молярном соотношении 11,86: 5,71: 16,18: 42,24: 24,01 (рисунок 1C). Интересно, что полисахарид, экстрагированный щелочью из R. senecis , как было обнаружено, состоит всего из четырех единиц, таких как ксилоза, рамноза, манноза и глюкоза, где все моносахариды были в незначительном количестве, за исключением глюкозы (Khatua and Acharya, 2017). Таким образом, наблюдение может указывать на то, что процесс горячей воды облегчает экстракцию различных типов мономеров в большей степени, чем другие типы растворителей.
Для оценки антиоксидантной способности рузенана в общей сложности восемь in vitro методов in vitro были выполнены здесь , и их активности суммированы в таблице 2. Первоначально для оценки активности по улавливанию радикалов были приняты четыре метода, такие как анализы улавливания супероксида, гидроксила, DPPH и ABTS. Результаты показали, что рузенан проявляет сильные зависящие от концентрации эффекты тушения супероксидных радикалов.При концентрации 200 и 400 мкг / мл экстракт был способен ингибировать 3,8 и 24,33% радикалов соответственно, что достигало уровня 74% только при концентрации 600 мкг / мл (рис. 2A). Кроме того, для оценки OH был применен кинетический подход. Уборочные свойства Русенана. Результат метода представлен на Фигуре 2В, которая показывает сильное зависимое от концентрации ингибирование радикалов при относительно низких концентрациях. Всего было 32 мусорщика.46, 44,29 и 64,17% при концентрациях 200, 300 и 500 мкг / мл соответственно. Более того, чтобы лучше визуализировать антиоксидантную активность, полисахарид был протестирован против коммерчески доступного свободного радикала DPPH. Результаты показали, что экстракт обладал сильным антирадикальным потенциалом, поскольку эффект гашения составлял 15,37, 35,56 и 54,32% при концентрациях 500, 1000 и 1500 мкг / мл соответственно (рис. 2С). Тем не менее, катион-радикал ABTS, широко применяемый лучший антиоксидантный анализ (Menghini et al., 2018), также использовался здесь, и его последствия показаны на рисунке 2D. При изменении концентраций от 100, 500 до 1000 мкг / мл эффект ингибирования увеличивался с 13,19, 43,98 до 65,78%. Кроме того, чтобы оценить способность ингибировать перекисное окисление липидов, рузенан был протестирован в сравнении с методом отбеливания β-каротином с использованием различных доз. Как показано на фиг. 2E, он легко реагировал на этот антиоксидантный анализ, в то время как активность увеличивалась в зависимости от концентрации. На уровне 100 и 300 мкг / мл экстракта значения ингибирования отбеливания составили 30.48 и 39,63% соответственно; в то время как применение 500 мкг / мл вызывало более чем 50% ингибирования. Кроме того, для определения восстанавливающей способности русенана был проведен анализ феррицианида / берлинской голубой. Согласно результатам, представленным на Фигуре 2F, полисахарид проявлял умеренную восстанавливающую способность, которая возрастала с увеличением концентрации. На уровне 2000 и 3000 мкг / мл снижающая способность концентрации составляла 0,27 и 0,39, которая постепенно повышалась до 0,51 при дозе 4000 мкг / мл. Тем не менее, согласно результату общей антиоксидантной активности, восстанавливающая способность 1 мг рузенана была эквивалентна 40 ± 1 мкг BHA.Наконец, способность фракции связывать ионы металлов оценивали после хелатирующей способности метода с ионами двухвалентного железа. В этом анализе наблюдали тенденцию концентрационного ответа в отношении связывающей способности экстракта Fe 2+ (фиг. 2G). При концентрации 50, 100 и 200 мкг / мл рузенан способен хелатировать 44,54, 60,92 и 71,51% ионов двухвалентного железа соответственно.
ТАБЛИЦА 2. Антиоксидантная активность сырого полисахарида, рузенана, выделенного из Russula senecis .
РИСУНОК 2. Антиоксидантная активность сырого полисахарида, рузенана, полученного из Russula senecis. (A) Активность по улавливанию супероксидных радикалов. (B) Активность по улавливанию гидроксильных радикалов. (C) Активность улавливания радикалов DPPH. (D) Активность по улавливанию радикалов ABTS. (E) Анализ отбеливания β-каротина. (F) Снижающая способность (G) Хелатирующая способность иона двухвалентного железа (результаты представляют собой среднее значение ± стандартное отклонение по крайней мере трех независимых экспериментов).
Согласно предыдущей литературе, на антиоксидантный потенциал природных полисахаридов может влиять их архитектура, такая как моносахаридный компонент, растворимость в воде, полярность, молекулярная масса, структура конформации цепи и внутримолекулярные водородные связи. В этом контексте некоторые исследователи также сообщили, что полимеры с большим содержанием рамнозы и маннозы способны проявлять лучшую антиоксидантную активность (Wang et al., 2017). Таким образом, можно было предположить, что замечательный антиоксидантный эффект Русенана был обусловлен не одним элементом, а результатом сочетания многих факторов.Следовательно, сравнительное исследование показало, что фракция из R. senecis может обладать более сильным потенциалом улавливания радикалов, чем сырые, а также чистые полисахариды, экстрагированные из R. virescens (Sun et al., 2010). Эти данные также предполагают, что рузенан проявляет лучшую хелатирующую способность, чем полисахаридный экстракт из P. ostreatus (Mitra et al., 2013) и P. florida (Saha et al., 2013). Недавно была обнаружена антиоксидантная активность частично очищенного неочищенного экстракта полисахарида из грибов S.commune , которые оказались намного беднее русенана (Klaus et al., 2011). Примечательно, что рузенан также оказался более эффективным, чем полисахарид, экстрагированный щелочью из R. senecis (Khatua and Acharya, 2017). В целом, можно утверждать, что Русенан обладает относительно сильной антиоксидантной способностью в отличие от других грибов, что отражено во всех вышеупомянутых анализах.
Макрофаги играют важную роль в защите хозяина, фагоцитируя патогены. В этой окружности, если количество моноцитов увеличивается, это представляет собой важный необходимый этап системы иммунологической защиты (Venter et al., 2014). Таким образом, поиск иммуностимулирующих препаратов, которые могут усиливать размножение и фагоцитарную активность, является одним из краеугольных камней современной медицины. Результаты ясно показали, что Русенан стимулировал эти явления в зависимости от дозы и времени.Как показано на Фигуре 3A, после обработки фракции (50, 100 и 200 мкг / мл) в течение 24 часов жизнеспособность клеток макрофагов увеличилась до 180,06, 148,61 и 108,49% соответственно по сравнению с отрицательным контролем. В то время как через 48 часов пролиферация увеличилась до 430,33, 584,74 и 405,08% при тех испытанных концентрациях. С другой стороны, LPS увеличивал пролиферацию до 127,57 и 147,74% после 24 и 48 часов лечения соответственно.
РИСУНОК 3. Влияние сырого полисахарида рузенана из Russula senecis на макрофаги. (A) Пролиферацию контролировали при обработке фракции в течение 24 и 48 часов методом WST и выражали в отношении (%) к контролю. (B) Фагоцитоз относительно контроля (%) определяли методом нейтрального красного. (C) Высвобождение NO в супернатанте клеток количественно определяли с использованием реагента Грисса. Во всех анализах LPS в концентрации 5 мкг / мл использовали в качестве положительного контроля. Результаты представляют собой среднее значение ± стандартное отклонение по крайней мере трех независимых экспериментов. ANOVA p <0.05; Что касается апостериорного теста Тьюки , знак « * » указывает на значительные различия по сравнению с необработанной контрольной группой. ∗ p <0,05, ∗∗ p <0,01, ∗∗∗ p <0,001.
Фагоцитарная активность увеличилась на 117,63, 137,16 и 137,19% после 24 ч инкубации за счет обработки 50, 100 и 200 мкг / мл рузенана, тогда как через 48 ч активность составила 146,41, 169,06 и 165,49% по сравнению с контролем. .В отличие от этого, LPS индуцировал 109,7 и 116,67% после лечения в течение 24 и 48 часов соответственно (рис. 3B). Такое наблюдение позволило сделать вывод, что русенан продемонстрировал профиль безопасности для макрофагов по сравнению с тестируемыми концентрациями и определенно обладал иммуностимулирующим эффектом, который был даже выше, чем у положительного контроля.
Помимо фагоцитоза, продукция АФК и NO макрофагами также играет ключевую роль в процессе уничтожения бактерий.NO работает в сочетании с супероксидами или перекисью водорода, генерируя пероксинитритные радикалы, которые могут убивать микробы, захваченные фагосомами. Таким образом, увеличение продукции NO и ROS клетками врожденного иммунитета можно использовать как представление состояния активации макрофагов (Forman and Torres, 2002; Razali et al., 2014). Как показано на фиг. 3C, рузенан проявлял способность стимулировать выработку NO в зависимости от концентрации. В дозах 50, 100 и 200 мкг / мл фракция индуцировала 24.Выработка 78, 21,5 и 14,95 мкМ NO в клетках RAW 264,7, соответственно, в то время как в контрольных наборах и наборах, стимулированных LPS, определяли количественно 13,33 и 24,47 мкМ NO. Данные также показали, что рузенан был способен индуцировать внутриклеточную продукцию ROS, поскольку интенсивность флуоресценции увеличивалась на 142,5, 137,276 и 120,037% для клеток, обработанных 50, 100 и 200 мкг / мл, соответственно, по сравнению с отрицательным контролем (рис. 4). Тогда как ЛПС может усиливать окислительные всплески только на 135,722% в клетках RAW264.7.
РИСУНОК 4. Влияние неочищенного полисахарида рузенана, выделенного из Russula senecis , на внутриклеточную продукцию ROS в макрофагах. Клетки RAW 264.7 обрабатывали фракцией или LPS, и через 24 ч определяли внутриклеточное образование ROS с помощью проточной цитометрии с использованием красителя DCFDA. Графики представляют логарифмическую интенсивность флуоресценции окислительного продукта DCFDA, обработанного (A), LPS при концентрации 5 мкг / мл и рузенаном при различных дозах, таких как (B) 50 мкг / мл (C) 100 мкг / мл (D) концентрация 200 мкг / мл по сравнению с отрицательным контролем. (E) Относительная интенсивность флуоресценции также была подробно проанализирована. Данные были представлены как среднее значение ± стандартное отклонение трех независимых экспериментов. ANOVA p <0,05; Что касается апостериорного теста Тьюки , знак « * » указывает на значительные различия по сравнению с необработанной контрольной группой. ∗∗∗ p <0,001.
Для удаления инородных тел и апоптозных клеток макрофаги мигрируют и непрерывно исследуют окружающую среду, чтобы обнаружить поврежденные ткани или вторжение патогенов.После столкновения со стимулами морфология клеток макрофагов изменяется из-за образования филоподий и ламеллиподий на краях поверхности, содержащих актин несущие шипы и актиновую нить, соответственно. Такая морфодинамика важна для моноцитов для прикрепления к внеклеточному матриксу, что в дальнейшем будет способствовать миграции к участкам воспаления (Kim et al., 2015). Чтобы исследовать влияние рузенана на активацию макрофагов, клетки RAW 264.7 инкубировали с экстрактом в течение 24 часов. Микроскопический анализ показал, что LPS, а также фракция при всех исследуемых дозах индуцировали изменение размера клеток от округлой структуры до дендритной.Кроме того, обработки также облегчили производство тонких листов, выходящих за границы ячеек, в отличие от нестимулированных ячеек (рис. 5).
РИСУНОК 5. Влияние сырого полисахарида, рузенана, выделенного из Russula senecis , на морфологию макрофагов. Клетки инкубировали в течение 24 ч с разными концентрациями рузенана, где в качестве положительного контроля использовали ЛПС в концентрации 5 мкг / мл. После этого клетки фиксировали, окрашивали DAPI, подвергали флуоресцентной микроскопии и снимали изображения. (A) Отрицательный контроль, (B) LPS, (C) 50 мкг / мл, (D) 100 мкг / мл, (E) 200 мкг / мл.
Цитокины и хемокины представляют собой мощные сигнальные молекулы, продуцируемые макрофагами, которые связывают врожденный и адаптивный иммунитет. Однако их секреция требует активации TLR и путей NF-κB, которые регулируют ряд генов (Sun et al., 2017).Чтобы исследовать, играют ли эти медиаторы роль в опосредованной рузенаном стимуляции макрофагов, неочищенный полисахарид инкубировали с клетками RAW 264.7 в течение 24 часов. Как показано на фиг. 6, уровни всех исследуемых генов заметно увеличивались при обработке фракции 50, 100 и 200 мкг / мл по сравнению с отрицательным контролем. Анализ показал, что рузенан в концентрации 50 мкг / мл был наиболее эффективным для индукции активации транскрипции медиаторов и цитокинов. При этой концентрации уровни мРНК TLR-2, TLR-4, NF-κB, COX-2, iNOS, TNF-α, Iκ-Bα и IFN-γ были значительно улучшены на 138.7, 245,7, 1406,5, 1615, 423,01, 511,7, 205,6 и 127,6% соответственно. Напротив, LPS активировал эти гены только на 224,1, 153, 293,3, 680,1, 222,69, 105,7, 204,2 и 265,1%, что указывает на сильный стимулирующий эффект рузенана.
РИСУНОК 6. Анализ механизма действия неочищенного полисахарида, рузенана, выделенного из Russula senecis в клетках RAW 264.7. (A) Тотальную РНК выделяли из клеток макрофагов после 24 ч инкубации либо с LPS (концентрация 5 мкг / мл), либо с рузенаном (концентрация 50, 100 и 200 мкг / мл) вместе с необработанными клетками.кДНК была приготовлена из соответствующих образцов РНК, и была проведена полуколичественная обратная транскриптаза-ПЦР для анализа экспрессии восьми различных генов, в которых β-актин считался геном домашнего хозяйства. Кроме того, интенсивность полос была количественно определена с помощью программного обеспечения ImageJ для обозначения увеличения уровня транскрипции соответствующих генов по отношению (%) к контролю: (B) TLR-2, (C) TLR-4, (D) NF-κB, (E) COX-2, (F) iNOS, (G) TNF-α, (H) Iκ-Bα, (I) IFN-γ.Значения были представлены как среднее ± стандартное отклонение по крайней мере двух независимых экспериментов. ANOVA p <0,05; Что касается апостериорного теста Тьюки , знак « * » указывает на значительные различия по сравнению с необработанной контрольной группой. ∗ p <0,05, ∗∗ p <0,01, ∗∗∗ p <0,001.
Чтобы установить иммуностимулирующий эффект рузенана, важно выяснить молекулярный механизм действия.Фракция, состоящая из другого моносахаридного фрагмента, может быть не способна проникать через мембрану клетки макрофага. Скорее они могут взаимодействовать с рецептором распознавания образов, таким как TLR2 / 4, на поверхности макрофагов, поскольку они распознают β-глюкан. В результате запускался нижестоящий сигнальный путь, который, в свою очередь, активировал NF-κB, наиболее важный регулятор экспрессии генов в моноцитах. Стимуляция фактора транскрипции отражалась экспрессией ряда воспалительных хемокинов или цитокинов.Кроме того, активированный NF-κB присоединяется к собственному промоторному участку, а также к гену-ингибитору, поскольку он саморегулирует его синтез. В конце концов, TNF-α, IFN-γ и COX-2 секретировались в ответ на русенан. Кроме того, макрофаги также экспрессировали iNOS, который способствовал метаболизму аргинина в NO, создавая высоко микробицидную среду.
В целом, рузенан с глюкозой (в основном β-глюканом) в качестве основного компонента можно рассматривать как мощный поглотитель свободных радикалов и стимулятор макрофагов у мышей.С точки зрения антиоксидантной активности неочищенный полисахарид проявлял высокий потенциал улавливания супероксидных радикалов, ингибирования OH . Поколение , стабилизирующий DPPH . , тушение радикала ABTS, ингибирование обесцвечивания β-каротина, снижение способности и хелатирующей способности Fe 2+ , что подтверждается низкими значениями EC 50 . Кроме того, образец также проявлял сильную иммуностимулирующую активность, при которой всего лишь при концентрации 50 мкг / мл он может инициировать врожденный иммунитет, способствуя пролиферации макрофагов, фагоцитозу, морфологическим изменениям, высвобождению NO, продукции ROS, транскрипции TLR-4, TLR-2. , NF-κB, COX-2, iNOS, TNF-α, IκB-α и IFN-γ.Принимая во внимание результаты настоящего исследования, можно подтвердить, что Русенан может быть разработан индивидуально в качестве мощного модификатора биологической реакции и стандартного антиоксидантного препарата.
SK провел все эксперименты, представленные в этой рукописи. К.А. задумал и разработал эксперименты. С.К. написал и сконструировал рукопись.
Авторы заявляют, что исследование проводилось при отсутствии каких-либо коммерческих или финансовых отношений, которые могут быть истолкованы как потенциальный конфликт интересов.
Мы хотели бы поблагодарить Департамент ботаники (UGC-CAS Phase VI, VII), Университет Калькутты и DST-FIST за инструментальную поддержку.
Акрамиене Д., Кондротас А., Диджяпетриене Ю. и Кевелайтис Е. (2007). Влияние β-глюканов на иммунную систему. Medicina 43, 597–606. DOI: 10.3390 / medicina43080076
CrossRef Полный текст | Google Scholar
Баяр, Н., Криаа, М., и Каммун, Р. (2016). Экстракция и характеристика трех полисахаридов, экстрагированных из кладок Opuntia ficus indica . Int. J. Biol. Макромол. 92, 441–450. DOI: 10.1016 / j.ijbiomac.2016.07.042
PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar
Чаттерджи А., Хатуа С., Чаттерджи С., Мукерджи С., Мукерджи А., Палои С. и др. (2013). Богатая полисахаридами фракция Termitomyces eurhizus ускоряет заживление индуцированной индометацином язвы желудка у мышей. Glycoconj. J. 30, 759–768. DOI: 10.1007 / s10719-013-9479-5
PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar
Дапкявичюс А., Венскутонис Р., ван Бик. Т. А. и Линссен Дж. П. Х. (1998). Антиоксидантная активность экстрактов, полученных с помощью различных процедур выделения из некоторых ароматических трав, выращиваемых в Литве. J. Sci. Продовольственное сельское хозяйство. 77, 140–146. DOI: 10.1002 / (SICI) 1097-0010 (199805) 77: 1% 3C140 :: AID-JSFA18% 3E3.0.CO; 2-K
CrossRef Полный текст | Google Scholar
Форман, Х.Дж. И Торрес М. (2002). Активные формы кислорода и клеточная передача сигналов: респираторный взрыв в передаче сигналов макрофагами. Am. J. Respir. Крит. Care Med. 166 (12, балл 2), S4 – S8. DOI: 10.1164 / rccm.2206007
PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar
Fu, S.L., Hsu, Y.H., Lee, P.Y., Hou, W.C., Hung, L.C., Lin, C.H. и др. (2006). Диоскорин, выделенный из Dioscorea alata , активирует пути передачи сигналов TLR4 и индуцирует экспрессию цитокинов в макрофагах. Biochem. Биофиз. Res. Commun. 339, 137–144. DOI: 10.1016 / j.bbrc.2005.11.005
PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar
Джавасис И. (2014). Биоактивные грибковые полисахариды как потенциальные функциональные ингредиенты пищевых продуктов и нутрицевтиков. Curr. Opin. Biotechnol. 26, 162–173. DOI: 10.1016 / j.copbio.2014.01.010
PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar
Холливелл, Б., Гаттеридж, Дж. М. К., и Арумо, О.I. (1987). Дезоксирибозный метод: простой тест в пробирке для определения констант скорости реакций гидроксильных радикалов. Анал. Биохим. 165, 215–219. DOI: 10.1016 / 0003-2697 (87) -3
PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar
Хьюз, Д. А. (1999). Влияние диетических антиоксидантов на иммунную функцию взрослых людей среднего возраста. Proc. Nutr. Soc. 58, 79–84. DOI: 10.1079 / PNS199
CrossRef Полный текст | Google Scholar
Хатуа, с., и Ачарья, К. (2016). Влияние параметров экстракции на физико-химические характеристики и антиоксидантную активность водорастворимых полисахаридов из Macrocybe gigantea (Massee) Pegler & Lodge. J. Food Sci. Technol. 53, 1878–1888. DOI: 10.1007 / s13197-015-2145-0
PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar
Хатуа С., Ачарья К. (2017). Щелочной экстрактивный сырой полисахарид из Russula senecis обладает антиоксидантным потенциалом и стимулирует реакцию врожденного иммунитета. J. Pharm. Pharmacol. 69, 1817–1828 гг. DOI: 10.1111 / jphp.12813
PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar
Хатуа, С., Дутта, А. К., Чандра, С., Палои, С., Дас, К., и Ачарья, К. (2017a). Представляем новый гриб от сообщества микофагов с акцентом на биомедицинскую эффективность. PLoS One 12: e0178050. DOI: 10.1371 / journal.pone.0178050
PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar
Хатуа, С., Гош, С., и Ачарья, К. (2017b). Упрощенный метод микротитровального анализа антиоксидантной активности in vitro. Asian J. Pharm. 11, S327 – S335.
Google Scholar
Хатуа С., Пол С. и Ачарья К. (2013). Гриб как потенциальный источник антиоксидантов нового поколения: обзор. Res. J. Pharm. Technol. 6, 496–505.
Google Scholar
Ким, Э. Дж., Ли, М. Ю. и Чон, Ю. Дж. (2015). Силимарин подавляет морфологические изменения в LPS-стимулированных макрофагах, блокируя путь NF-κB. Korean J. Physiol. Pharmacol. 19, 211–218. DOI: 10.4196 / kjpp.2015.19.3.211
PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar
Клаус А., Козарски М., Никшич М., Яковлевич Д., Тодорович Н. и Гриенсвен Л. Дж. Л. Д. (2011). Антиоксидантная активность и химическая характеристика полисахаридов, экстрагированных из базидиомицета Schizophyllum commune . LWT Food Sci. Technol. 44, 2005–2011. DOI: 10.1016 / j.lwt.2011.05.010
CrossRef Полный текст | Google Scholar
Козарски М., Клаус А., Никшич М., Яковлевич Д., Хелспер, Дж. П. Ф. Г. и Ван Гриенсвен, Л. Дж. Л. Д. (2011). Антиоксидантная и иммуномодулирующая активность экстрактов полисахаридов лекарственных грибов Agaricus bisporus , Agaricus brasiliensis , Ganoderma lucidum и Phellinus linteus . Food Chem. 129, 1667–1675. DOI: 10.1016 / j.foodchem.2011.06.029
CrossRef Полный текст | Google Scholar
Ли, Дж.С., Сыница, А., Ким, Х. Б., Чой, Д. Дж., Ли, С., Ли, Дж. И др. (2013). Очистка, характеристика и иммуномодулирующая активность пектинового полисахарида, выделенного из плодов шелковицы корейской Oddi ( Morus alba L.). Int. Иммунофармакол. 17, 858–866. DOI: 10.1016 / j.intimp.2013.09.019
PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar
Ли, К., Хуан, К., Фу, X., Юэ, X.-J., Лю, Р. Х., и Ю, Л.-Дж. (2015). Характеристика, антиоксидантная и иммуномодулирующая активность полисахаридов из Prunella vulgaris Linn. Int. J. Biol. Макромол. 75, 298–305. DOI: 10.1016 / j.ijbiomac.2015.01.010
PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar
Лю, Л., Ли, Х., Сюй, Р., и Ли, П. (2017). Эксполисахариды из Bifidobacterium animalis RH активируют макрофаги RAW 264.7 через толл-подобный рецептор 4. Food Agric. Иммунол. 28, 149–161. DOI: 10.1080 / 09540105.2016.1230599
CrossRef Полный текст | Google Scholar
Менгини, Л., Leporini, L., Vecchiotti, G., Locatelli, M., Carradori, S., and Ferrante, C. et al. (2018). Crocus sativus L. рыльца и побочные продукты : качественный отпечаток пальца, антиоксидантный потенциал и активность по ингибированию ферментов. Food Res. Int. 109, 91–98. DOI: 10.1016 / j.foodres.2018.04.028
PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar
Митра П., Хатуа С. и Ачарья К. (2013). Улавливание свободных радикалов и активация NOS водорастворимого сырого полисахарида из Pleurotus ostreatus . Asian J. Pharm. Clin. Res. 6, 67–70.
Google Scholar
Прити, С., и Мэри, С. А. (2016). Скрининг природных полисахаридов, экстрагированных из плодов Pithecellobium dulce в качестве фармацевтического адъюванта. Int. J. Biol. Макромол. 92, 347–356. DOI: 10.1016 / j.ijbiomac.2016.07.036
PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar
Прието П., Пинеда М. и Агилар М. (1999). Спектрофотометрическое количественное определение антиоксидантной способности через образование комплекса фосфомолибдена: специфическое применение для определения витамина Е. Анал. Биохим. 269, 337–334. DOI: 10.1006 / abio.1999.4019
PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar
Пуэртоллано, М. А., Пуэртоллано, Э., Сьенфуэгос, Г. Б., и Пабло, М. А. (2011). Диетические антиоксиданты: иммунитет и защита шланга. Curr. Вершина. Med. Chem. 11, 1752–1766. DOI: 10.2174 / 156802611796235107
CrossRef Полный текст | Google Scholar
Разали Ф. Н., Исмаил А., Абидин Н. З. и Шуиб А. С. (2014).Стимулирующее действие полисахаридной фракции из Solanum nigrum на мышиные макрофаги RAW 264.7. PLoS One. 9: e108988. DOI: 10.1371 / journal.pone.0108988
PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar
Рутес, А. К., Смидерл, Ф. Р., и Якомини, М. (2015). D-глюканы из съедобных грибов: обзор методов экстракции, очистки и химической характеристики. Carbohydr. Polym. 117, 753–761. DOI: 10,1371 / журнал.pone.0108988
PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar
Саха, С., Хатуа, С., Палои, С., и Ачарья, К. (2013). Антиоксидантные и активирующие свойства синтазы оксида азота водорастворимых полисахаридов из Pleurotus florida . Int. J. Green Pharm. 7, 182–188. DOI: 10.4103 / 0973-8258.120190
CrossRef Полный текст | Google Scholar
Shi, J., Zhang, J., Sun, Y., Qu, J., Li, L., Prasad, C., et al. (2016). Физико-химические свойства и антиоксидантная активность полисахаридов, последовательно извлекаемых из осадка семян пиона. Int. J. Biol. Макромол. 91, 23–30. DOI: 10.1016 / j.ijbiomac.2016.05.082
PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar
Sun, H., Ni, X., Zenga, D., Zou, F., Yang, M., Peng, Z., et al. (2017). Двунаправленная иммуномодулирующая активность ферментированных полисахаридов из Yupingfeng . Res. Вет. Sci. 110, 22–28. DOI: 10.1016 / j.rvsc.2016.10.015
PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar
Вс, З., Чжан, Л., Чжан, Б., и Ню, Т. (2010). Структурная характеристика и антиоксидантные свойства полисахаридов плодовых тел Russula virescens . Food Chem. 118, 675–680. DOI: 10.1016 / j.foodchem.2009.05.036
CrossRef Полный текст | Google Scholar
Сыница А., Мичкова К., Сыница А., Яблонски И., Спевачек Ю., Эрбан В. и др. (2009). Глюканы плодовых тел культурных грибов Pleurotus ostreatus и Pleurotus eryngii : структура и потенциальная пребиотическая активность. Carbohydr. Polym. 76, 548–556. DOI: 10.1016 / j.carbpol.2008.11.021
CrossRef Полный текст | Google Scholar
Terra, X., Valls, J., Vitrac, X., Mérrillon, J., Arola, L., Ardèvol, A., et al. (2007). Процианидины виноградных косточек действуют как противовоспалительные агенты в макрофагах RAW 264.7, стимулированных эндотоксинами, путем ингибирования сигнального пути NFκB. J. Agric. Food Chem. 55, 4357–4365. DOI: 10.1021 / jf0633185
PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar
Венкаталакшми, П., Вадивель, В., Бринда, П. (2016). Роль фитохимических веществ как иммуномодулирующих агентов: обзор. Int. J. Green Pharm. 10, стр. 1 – стр. 18.
Google Scholar
Вентер, Г., Орлеманс, Ф. Т. Дж. Дж., Вейерс, М., Виллемсе, М., Франсен, Дж. А. М., и Виринга, Б. (2014). Глюкоза контролирует морфодинамику LPS-стимулированных макрофагов. PLoS One 9: e96786. DOI: 10.1371 / journal.pone.0096786
PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar
Влатка, П., Весна, З., Слободан, Г., Синиша, С., Инес, П., Лана, В. (2010). Биологические эффекты дрожжевых β-глюканов. Agric. Conspec. Sci. 75, 149–158.
Google Scholar
Wang, C., Yu, X., Cao, Q., Wang, Y., Zheng, G., Tan, T. K., et al. (2013). Характеристика мышиных макрофагов из костного мозга, селезенки и брюшины. BMC Immunol. 14: 6. DOI: 10.1186 / 1471-2172-14-6
PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar
Ван, X., Чжан, Ю., Лю, З., Чжао, М., и Лю, П. (2017). Очистка, характеристика и антиоксидантная активность полисахаридов, выделенных из коры Periplocae. Молекулы 22: E1866. DOI: 10.3390 / молекулы22111866
PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar
Образец WOP содержал следующие компоненты (в сухом виде): белки (пептиды), 94.52 ± 0,56%; липиды 0,05 ± 0,01%; зола 2,32 ± 0,25%; влажность 2,35 ± 0,23%. Как и ожидалось, пептиды были основным компонентом WOP. Растворение образцов пшеничной клейковины во время гидролиза и удаление нерастворимых, непереваренных небелковых веществ после гидролиза привело к высокому содержанию белка 25 . Нанофильтрация удалила большую часть минеральных солей, а оставшуюся золу образовали Na + и Cl —.
Как показано в таблице 1, WOP были богаты глутаминовой кислотой (35.23 ± 0,12%), пролин (10,62 ± 0,08%), лейцин (5,03 ± 0,05%), серин (4,12 ± 0,01%) и фенилаланин (3,81 ± 0,05%). Кроме того, соотношение содержания незаменимых (лизин, триптофан, фенилаланин, метионин, треонин, изолейцин, лейцин и валин) и полусущественных (аргинин и гистидин) аминокислот составляло 21,95% и 4,48% соответственно. Богатый аминокислотный состав оказывает значительное влияние на регуляцию физиологических функций человека. Например, глутамат является основным возбуждающим нейромедиатором, используемым в синапсах центральной нервной системы, и оказывает важное влияние на поддержание передачи сигналов нервных клеток 25 .Как первая ограничивающая аминокислота, лизин может влиять на абсорбцию и использование других аминокислот, а также на метаболизм и иммунную функцию. 26 . Лейцин, изолейцин и пролин представляют собой аминокислоты с разветвленной цепью и являются важными источниками метаболической энергии 27 . Функциональная активность пептида в решающей степени зависит от типа и количества аминокислот, входящих в его состав. Предыдущие исследования показали, что многие аминокислоты и их производные, такие как глутаминовая кислота, лейцин, гистидин, аргинин, тирозин, лизин, валин, аланин, цистеин и пролин, обладают антиоксидантным действием.Kong et al. 28 сообщили, что олигопептиды кукурузы обладают значительной антиоксидантной способностью, а такие аминокислоты, как лейцин, обладают сильным хелатирующим действием. В WOP относительное содержание антиоксидантных аминокислот достигает 65,18%, таких как лейцин, аргинин, тирозин, цистеин, валин, аланин и другие аминокислоты, потенциально приводящие к хелатированию ионов металлов, поэтому WOP может быть природным веществом. с антиоксидантной активностью. Кроме того, согласно предыдущим исследованиям, многие пептиды, ингибирующие АПФ, содержат валин, аланин, лейцин, тирозин и фенилаланин 29 , что позволяет предположить, что WOP может содержать пептиды, ингибирующие АПФ, и иметь потенциальную ингибирующую активность.
Таблица 1 Аминокислотный состав (в пересчете на сухое вещество) WOP (%) a .Для анализа молекулярно-массового распределения WOP применялась эксклюзионная хроматография с системой высокоэффективной жидкостной хроматографии (ВЭЖХ). Согласно результатам (рис. 1), среди WOP преобладали пептиды с молекулярной массой ниже 1000 (94,32%). Большинство пептидов в WOP (61,23%) находились в диапазоне молекулярной массы 500–140 и были в основном ди- и трипептидами.Согласно сообщениям, ди- и трипептиды активно транспортируются в эпителиальных клетках кишечника с помощью специфических пептидных транспортеров (например, PepT1, PepT2), а аминокислотные остатки ди- и трипептидов системно абсорбируются быстрее, чем свободные аминокислоты 30,31 .
Рисунок 1Хроматограмма WOP, показывающая распределение молекулярной массы (MW). На вставке показано содержание пептидов с различными классами диапазонов MW в WOP.
Эти данные показывают, что двухэтапный ферментативный гидролиз с последующим многоступенчатым разделением может эффективно удалять большие пептиды или непереваренные белки и производить олигопептиды.Этот метод ферментативного гидролиза также успешно применялся в прошлых исследованиях 32,33 . Молекулярная структура и масса сильно влияют на функциональные характеристики пептидов, на которые сильно влияют условия обработки. Широко известно, что большинство пептидов, ингибирующих АПФ, из пищевых белков имеют относительно низкую молекулярную массу, большинство из которых являются короткими пептидами менее 1000 Да 34 . Более того, предыдущие исследования показали, что по сравнению с относительно большими пептидами, небольшие пептиды обладают более высокой антиоксидантной активностью, а некоторые ди- и трипептиды показали большую антиоксидантную активность, чем составляющие их аминокислоты 35,36 .Согласно недавним достижениям в тест-системах окислитель-антиоксидант, эффекты небольших пептидов были сильнее, чем эффекты более крупных пептидов и белков 37 .
В качестве ферментативного гидролизата WOP продемонстрировал сильную поглощающую способность против 1,1-дифенил-2-пикрилгидразила (DPPH), гидроксила и 2,2′-азинобис (3-этилбензотиазолин-6-сульфоновой кислоты). диаммониевая соль (ABTS) свободные радикалы. Концентрация для 50% максимального эффекта (EC 50 ) DPPH и активности по улавливанию свободных радикалов гидроксила составляла 1.52 ± 0,09 и 6,23 ± 0,18 мг / мл, соответственно, а активность ABTS по улавливанию свободных радикалов составила 1,23 ± 0,03 ммоль эквивалента Trolox (TE) / г образца. Zhang et al. гидролизованный белок зародышей пшеницы с помощью алкалазы 2,4 л для получения пептидов зародышей пшеницы (молекулярная масса <1000 Да), и было обнаружено, что значение EC 50 для DPPH составляет 2,77 мг / мл 38 . Карами и др. оценили активность DPPH по улавливанию свободных радикалов трех гидролизатов белка зародышей пшеницы, приготовленных с помощью алкалазы, пепсина или протеиназы K, и значения EC 50 были равны 1.56, 1,78 и 1,83 мг / мл соответственно 24 . По сравнению с вышеупомянутыми исследованиями, активность WOP по улавливанию свободных радикалов DPPH в этом исследовании была немного выше. Кроме того, значение WOP для гидроксильных свободных радикалов согласно EC 50 было лучше, чем у пептидов, полученных из обезжиренных зародышей пшеницы (6,04 мг / мл) 39 . Кроме того, WOP продемонстрировал высокое значение емкости абсорбции кислородных радикалов (ORAC) (1216,87 ± 11,51 ммоль TE / г образца) (таблица 2). Пептиды с высоким содержанием антиоксидантов, полученные путем гидролиза белков куриных яиц с помощью различных протеаз, имели значение ORAC между 900–1300 ммоль эквивалента тролокса (TE) / г образца, что близко к WOP 40 .Более того, эти антиоксидантные свойства WOP показали сильную дозозависимую зависимость. Результаты показали, что двухэтапный ферментативный гидролиз является эффективным подходом для получения антиоксидантного гидролизата из пшеничного глютена. Учитывая его очевидные антиоксидантные свойства, аминокислоты или пептиды, содержащиеся в WOP, действуют как доноры электронов и реагируют со свободными радикалами с образованием стабильных продуктов и цепных реакций концевых радикалов. Среди четырех типов результатов системы анализа антиоксидантов, ABTS активность WOP по улавливанию свободных радикалов была чрезвычайно высокой.Более того, эксперимент ABTS, казалось, был очень эффективным в оценке антиоксидантной способности. Поэтому в дальнейших экспериментах был использован анализ свободных радикалов антиоксидантов ABTS.
Таблица 2 Антиоксидантная активность WOP с использованием четырех типов систем анализа.Как показано на фиг. 2, АПФ-ингибирование WOP постепенно увеличивалось с увеличением концентрации. Степень ингибирования составляла 77% при концентрации 2,5 мг / мл, а значения половины максимальной ингибирующей концентрации (IC 50 ) равнялись 0.68 ± 0,03 мг / мл. По данным Bougatef et al. 41 , гидролизат белка сардины имел значение IC 50 1,2 мг / мл для АПФ. Gu et al. 33 показали, что значение IC 50 олигопептидов, полученных из черной шелковистой птицы, для ACE составляло 2,86 мг / мл. Более того, после измерения ингибирующей активности АПФ 48 гидролизатов морских белков He et al. 42 найдено значение IC 50 в диапазоне от 0,17 до 501,7 мг / мл. По сравнению с этими данными, WOP обладал относительно высокой активностью ингибирования АПФ.Поскольку в WOP было много видов пептидов, мы предположили, что некоторые из пептидов в WOP могут быть конкурентными ингибиторами с большим сродством к активной области АПФ, чем WOP. Согласно исследованиям 32,34 , ингибирующая активность пептидов в отношении АПФ может быть связана с длиной их пептидных цепей. Молекулярные массы пептидов, ингибирующих АПФ, относительно низкие, обычно менее 1000. Кроме того, гидрофобные аминокислоты на С-конце антигипертензивных пептидов имеют важное значение для активности антигипертензивных пептидов 33 .WOP может содержать относительно большое количество пептидов, которые могут ингибировать АПФ. Следовательно, есть веская причина продолжать идентификацию и очистку пептидов, ингибирующих АПФ, из WOP.
Фигура 2Ангиотензин-I-превращающий фермент (АПФ) ингибирующая активность WOP при различных концентрациях. Данные представляют собой среднее значение трех экспериментов. Планки погрешностей показывают стандартные отклонения.
Колонка RP-HPLC применялась для фракционирования WOP для определения возможного влияния состава пептидов на антиоксидантную активность и ингибирование АПФ Мероприятия.На рис. 3А показаны профили элюирования WOP. В соответствии с формой, высотой, площадью и разрешением пиков были собраны шесть компонентных пиков, фракции 1–6, где каждый компонентный пик не обязательно представлял один пептид. Повторную хроматографию использовали для отдельного сбора шести фракций и определяли их активность по улавливанию свободных радикалов и АПФ. Согласно рис. 3B, фракции 2–6 проявляли равную или даже более высокую активность по улавливанию радикалов ABTS (0,91–1,62 ммоль TE / г образца), чем WOP (1.23 ± 0,03 ммоль TE / г образца), но фракция 1 имела более низкую активность.
Рисунок 3( A ) Профиль элюирования WOP, разделенного методом RP-HPLC, на колонке XBridge BEh230 C18 (4,6 мм × 250 мм) при скорости потока 0,6 мл / мин с линейным градиентом растворителя A ( 0,1% TFA в воде Milli-Q, об. / Об.) И растворителе B (80% ацетонитрила с 0,1% TFA, об. / Об.). Было собрано шесть фракций и обозначено как фракции 1–6. ( B ) Активность ABTS по улавливанию свободных радикалов собранных фракций из системы RP-HPLC.Результаты выражены в ммоль эквивалента Trolox (TE) / г образца. ( C ) Ингибирующая активность ACE собранных фракций из системы RP-HPLC при концентрации 0,7 мг / мл. Планки погрешностей указывают стандартное отклонение (n = 3).
Результаты ингибирования АПФ были аналогичны приведенным выше, где фракции 2-6 показали более высокую ингибирующую активность АПФ (61,21–89,36%), чем WOP, а фракция 1 продемонстрировала более низкую активность ингибирования АПФ (34,18 ± 2,06%) при концентрация 0.7 мг / мл (рис. 3C). Ингибирующая активность фракций 5 и 6 была в 1,39 и 1,74 раза выше, чем у WOP, соответственно.
Согласно этим результатам, некоторые пептиды в определенных фракциях могут иметь относительно более высокую активность ABTS по улавливанию свободных радикалов и ингибирование АПФ (или присутствуют в более высокой концентрации), чем пептиды в других фракциях. Поэтому для дальнейшей идентификации и скрининга активных пептидов были выбраны все фракции 1–6.
Для фракций 1–6 использовали квадрупольный времяпролетный масс-спектрометр с электрораспылением и ионизацией (ESI-Q-TOF2) для распознавания активных пептидов, что привело к идентификация 40 активных пептидов из WOP, аминокислотные последовательности и относительные молекулярные массы которых перечислены в таблице 3.Эти пептиды состояли из 2–6 аминокислот, что соответствовало анализу относительной молекулярной массы, описанному выше. Сообщалось, что на антиоксидантную и ингибирующую АПФ активность пептидов сильно влияла молекулярная масса пептида. Peng et al. 43 сообщил, что фракция пептидов 100–2800 Да, очищенная из гидролизата сывороточного белка, обладала самой сильной антиоксидантной активностью. Сайга и др. 44 изучили пептиды в гидролизованном экстракте мышц куриной грудки, и результат показал, что небольшие пептиды (<1000 Да) показали более высокую активность, чем пептиды с молекулярной массой> 1000 Да.Все пептиды, идентифицированные в нашем исследовании, были небольшими пептидами с молекулярной массой <1000 Да. Следовательно, ожидалось, что пептиды, идентифицированные в этом исследовании, будут проявлять антиоксидантную и ингибирующую активность АПФ. Выбор пептидов для анализов активности ABTS по улавливанию свободных радикалов и активности ингибирования ACE был основан на предыдущем опыте и связанных с ним ссылках. Поэтому мы провели предварительный анализ структурных характеристик и аминокислотного состава антиоксидантных пептидов и пептидов, ингибирующих АПФ.В частности, согласно предыдущим исследованиям, некоторые ди- и трипептиды с ароматическими аминокислотными остатками (Tyr или Trp) и пептиды, содержащие Arg, Pro, Gln или Asn, с высокой вероятностью обладают сильной антиоксидантной активностью 1,10,12 . Кроме того, пептиды, несущие Tyr, Phe, Trp, Pro или гидрофобный аминокислотный остаток на С-конце, обладают сильной ингибирующей активностью АПФ 45 . На основе этих отчетов мы выбрали и синтезировали 15 пептидов в качестве потенциальных кандидатов (таблица 4) с этими предпочтительными характеристиками из фракций 2–6 для дальнейшего тестирования, чтобы определить их активность по улавливанию свободных радикалов ABTS и активность ингибирования АПФ.
Таблица 3 Идентификация пептидов с помощью квадрупольной времяпролетной масс-спектрометрии (Q-TOF2) фракций WOP, собранных с помощью высокоэффективной жидкостной хроматографии с обращенной фазой (RP-HPLC). Таблица 4 Синтез 15 предпочтительных пептидов.Общая антиоксидантная способность может быть легко оценена с помощью эксперимента ABTS. На фигуре 4A показана способность ABTS улавливать свободные радикалы, в которой пять пептидов (Leu-Tyr, Pro-Tyr, Tyr-Gln, Ala-Pro-Ser-Tyr, Arg-Gly-Gly-Tyr) имели чрезвычайно высокие характеристики.Их активность по улавливанию свободных радикалов ABTS составляла 6,07 ± 0,38, 7,28 ± 0,29, 11,18 ± 1,02, 5,93 ± 0,20 и 9,04 ± 0,47 ммоль эквивалента тролокса (ТЕ) / г образца, соответственно. Активность по улавливанию свободных радикалов была в 4,93, 5,92, 9,08, 4,82 и 7,35 раз выше активности WOP для этих пептидов, соответственно, а другие пептиды обладали более слабой способностью ABTS улавливать свободные радикалы. Хотя некоторые пептиды не проявляют сильной активности ABTS по улавливанию свободных радикалов, мы не уверены, обладают ли они синергетическим действием с другими пептидами для повышения общей антиоксидантной активности WOP.С другой стороны, на основании этих результатов мы были уверены, что по крайней мере пять пептидов (Leu-Tyr, Pro-Tyr, Tyr-Gln, Ala-Pro-Ser-Tyr и Arg-Gly-Gly-Tyr) входят в состав WOP. основной вклад в деятельность ABTS по улавливанию свободных радикалов. Активные центры и группы, которые они выставили, могут действовать как доноры электронов, останавливать цепную реакцию свободных радикалов и в конечном итоге достигать антиоксидантных эффектов 33 . Beermann et al. 46 выделили и очистили соевые пептиды и обнаружили, что дипептид Leu-Tyr обладает превосходными антиоксидантными эффектами, что хорошо согласуется с нашими экспериментами в данном документе.Насколько нам известно, другие четыре пептида (Pro-Tyr, Tyr-Gln, Ala-Pro-Ser-Tyr, Arg-Gly-Gly-Tyr) ранее не упоминались как антиоксидантно-активные пептиды. Chen et al. 47 ранее предполагали, что короткие пептиды с ароматическими аминокислотными остатками (Trp или Tyr) могут обладать сильной антиоксидантной активностью. С-концы четырех из пяти антиоксидантных пептидов, идентифицированных в настоящем исследовании, были Tyr. Сайто и др. 48 сообщил, что трипептид Tyr-His-Tyr, отделенный от гидролизата соевого белка, обладает сильной антиоксидантной способностью и большим синергическим действием с фенольными антиоксидантами (например,g., BHA и δ-токоферол). Благодаря особым способностям фенольных и индольных групп антиоксидантная активность Trp и Tyr может действовать как доноры водорода. Имея более длительный срок жизни, чем у простых пероксирадикалов, гораздо более стабильные феноксильные и индоильные радикалы ингибируют любую обратную реакцию или распространение опосредованной радикалами цепной реакции перекисного окисления 48 . Кроме того, окисление определенных сайтов может происходить из-за связывания ионов металлов или других исходных материалов на определенных сайтах полипептидов.Селективная модификация пептида остатками His, Pro, Met, Cys, Arg, Lys и Trp также может быть связана с его антиоксидантной активностью 48 .
Рисунок 4ABTS активность по улавливанию свободных радикалов ( A ) и ингибирующая активность ангиотензин I-превращающего фермента (ACE) ( B ) 15 пептидов, идентифицированных из фракций 2–6 с помощью квадрупольного времени пролета (Q -TOF2) масс-спектрометрия. Концентрация пептидов, используемых для анализа ингибирующей активности АПФ, составляла 0.7 мг / мл. Планки погрешностей указывают стандартное отклонение (n = 3). TE расшифровывается как эквивалент Trolox.
На рис. 4В показано, что 15 пептидов проявляли различные ингибирующие активности АПФ при 0,7 мг / мл (в диапазоне от 1,94 до 83,13%). Среди них пять пептидов, Leu-Tyr, Leu-Val-Ser, Tyr-Gln, Ala-Pro-Ser-Tyr и Arg-Gly-Gly-Tyr, привлекли наше внимание из-за их повышенной ингибирующей активности против АПФ по сравнению с что из WOP. При этой концентрации их активности составляли 1,59, 1,64, 1,18, 1,04 и 1.В 01 раз больше, чем у WOP, соответственно. Кроме того, мы определили значения IC 50 для пяти активных пептидов: Leu-Tyr (0,31 ± 0,02 ммоль / л), Leu-Val-Ser (0,60 ± 0,03 ммоль / л), Tyr-Gln (2,00 ± 0,13 ммоль / л). / Л), Ala-Pro-Ser-Tyr (1,47 ± 0,08 ммоль / л) и Arg-Gly-Gly-Tyr (1,48 ± 0,11 ммоль / л). Рассчитанные значения IC 50 для пяти активных пептидов составили 0,09, 0,19, 0,62, 0,64 и 0,67 мг / мл, соответственно, в единицах мг / мл, которые составили 7,56, 3,58, 1,10, 1,06 и 1,01. раз больше, чем WOP (0.68 ± 0,03 мг / мл) соответственно. Насколько нам известно, нет сообщений о том, что три пептида Leu-Val-Ser, Ala-Pro-Ser-Tyr и Arg-Gly-Gly-Tyr обладают ингибирующей активностью в отношении АПФ. Однако есть сообщения, что дипептид Leu-Tyr обладал ингибирующей активностью в отношении АПФ (IC 50 = 38,5 мкМ) и мог снижать артериальное давление 49,50 . Кроме того, Leu-Tyr и Leu-Val-Arg, ранее выделенные из гидролизата мышц сардины, обладают хорошим ингибирующим действием на АПФ 41 . Также уже было известно, что дипептид Tyr-Gln выделен из гречихи в качестве пептида, ингибирующего АПФ (IC 50 = 628 мкМ) 51 .В исследовании Balti et al. 52 , было обнаружено, что Ala-His-Ser-Tyr, выделенный из каракатиц, обладает ингибирующей активностью в отношении АПФ (IC 50 = 11,6 мкМ). Интересно, что структура Ala-Pro-Ser-Tyr, обнаруженная в настоящем исследовании, была аналогична структуре Ala-His-Ser-Tyr. Следовательно, был сделан вывод, что эти две пептидные последовательности могут приводить к хорошему связыванию с АПФ. Для Arg-Gly-Gly-Tyr другой аналогичный тетрапептид, Tyr-Gly-Gly-Tyr, оказался эффективным ингибитором АПФ in vitro Saito et al. 53 . Кроме того, продукт расщепления Tyr-Gly-Gly-Tyr, Gly-Gly-Tyr, трипептида, также проявлял хорошую ингибирующую активность (IC 50 = 1,3 мкМ), как показано Shamloo et al. 54 . В меньшей степени высвободившаяся аминокислота тирозин может также проявлять ингибирующую активность в отношении АПФ. 55 . В настоящем исследовании Arg-Gly-Gly-Tyr, который имеет последовательность Gly-Gly-Tyr, проявил сильную ингибирующую активность в отношении АПФ. Его активность может быть обусловлена предпочтительной аминокислотной последовательностью (Gly-Gly-Tyr) или аминокислотой (тирозин) и их синергическим действием с аминокислотой аргинином на N-конце.Что касается связи между структурой и активностью пептидов, ингибирующих АПФ, Ryan et al. 56 предположил, что гидрофобные, разветвленные или ароматические аминокислоты являются важными компонентами пептидов, ингибирующих АПФ, в то время как гидрофильные аминокислоты обладают слабой ингибирующей активностью в отношении АПФ, поскольку они несовместимы с активным сайтом АПФ. Cheung et al. 57, отметили, что активные пептиды, как правило, содержат Pro, Phe или Tyr на С-конце и Val или Ile на N-конце. Некоторые пептиды, ингибирующие АПФ, с аналогичными структурами на концах C / N, такие как лактотрипептиды Val-Pro-Pro и Ile-Pro-Pro в йогурте, Ile-Ala-Pro в гидролизате глиадина, Ala-Pro и Val-Arg в лососе. гидролизат, Tyr-Ala-Pro и Val-Ile-Ile в гидролизате каракатиц и Ile-Gln-Pro в водорослях были выделены и идентифицированы 22,58,59,60,61 .Среди этих пептидов в клинических испытаниях было показано, что лактотрипептиды Val-Pro-Pro и Ile-Pro-Pro обладают хорошими антигипертензивными эффектами. Однако природа C / N-концевых аминокислот и то, содержат ли они гидрофобные аминокислоты, могут не связываться с ингибирующей активностью коротких пептидов ACE. Несмотря на небольшое количество аминокислот в олигопептидах, простые вторичные структуры образуются за счет взаимодействий между ними и влияют на конкуренцию за активную область АПФ. Антигипертензивный препарат каптоприл синтезируется в соответствии с конфигурацией пролина 62 .Пептид, ингибирующий АПФ, является конкурентным ингибитором с сильным сродством к активной области АПФ. Его сродство к АПФ выше, чем у ангиотензина I или брадикинина, и его нелегко высвободить из области связывания АПФ, что препятствует двум процессам биохимической реакции: каталитическому гидролизу ангиотензина I в ангиотензин II и каталитическому гидролизу брадикинина в инактивированный фрагмент, снижающий артериальное давление 16,17 .
Пять антиоксидантных пептидов и пять пептидов, ингибирующих АПФ, были идентифицированы с помощью WOP.В частности, четыре пептида, Leu-Tyr, Tyr-Gln, Ala-Pro-Ser-Tyr и Arg-Gly-Gly-Tyr, обладали антиоксидантной активностью и активностью ингибирования АПФ. Высокоэффективная жидкостная хроматография-тандемная масс-спектрометрия (ВЭЖХ – МС / МС) применялась для оценки концентрации высокоактивных пептидов в WOP. Результаты показали, что содержание Leu-Tyr, Pro-Tyr, Tyr-Gln, Ala-Pro-Ser-Tyr, Arg-Gly-Gly-Tyr и Leu-Val-Ser составляло 155,04 ± 8,36, 2,08 ± 0,12, 1,95 ± 0,06, 22,70 ± 1,35, 0,25 ± 0,01 и 53,01 ± 2,73 мкг / г WOP соответственно (таблица 5).Интересно, что было обнаружено, что четыре пептида обладают как хорошей антиоксидантной активностью, так и активностью ингибирования АПФ. Эти пептиды потенциально могут быть включены в функциональные продукты питания для антиоксидантной защиты или для частичного устранения высокого кровяного давления. В этом исследовании наши результаты были ограничены in vitro. Неясно, действуют ли идентифицированные активные пептиды in vivo. Следовательно, необходимы дальнейшие исследования для оценки эффектов этих активных пептидов in vivo. Предыдущие исследования показали, что биоактивность низкомолекулярных пептидов может сохраняться во время пищеварения в желудочно-кишечном тракте 32,33 .Биодоступность и метаболизм активных пептидов также будут дополнительно изучены, чтобы лучше понять многофункциональность пептидов.
Таблица 5 Количественный анализ активных пептидов в WOP.Martysiak-urowska D., Wenta W., 2012. Сравнение методов ABTS и DPPH для оценки общей антиоксидантной способности
грудного молока. Acta Sci. Pol., Technol. Алимент. 1 (11), 83-89.
88 www.food.actapol.net/
зрелое грудное молоко. J. Matern. Фетальный новорожденный. Med. 11
(4), 275-279.
Aycicek A., Erel O., Kocyigit A., Selek S., Demirkol M.R.,
2006. Грудное молоко обеспечивает лучшую антиоксидантную силу
, чем смеси. Питание 22 (6), 616-619.
Brand-Williams W., Cuvelier M.E., Berset C., 1995. Использование свободнорадикального метода
для оценки антиоксидантной активности.
Лебенсм. Wiss. у.- Технол 28 (1), 25-30.
Кано А., Акоста М., Арнаро М. Б., 2000. Метод измерения антиоксидантной активности
мочевины в органических средах: применение к
липофильным витаминам. Редокс Реп.5 (6), 365-370.
Compagnoni G., Giuffre B., Lista G., Mosca F., Marini A.,
2004. Уровни CoQ10 в плазме у младенцев, находящихся на грудном вскармливании, сравнимы с
по сравнению с младенцами на искусственном вскармливании. Биол. Новорожденный 86, 165-169.
Куберо Дж., Санчес К.Л., Браво Р., Санчес Дж., Родригес
А.Б., Риверо М., Баррига С., 2009. Анализ активности тиоксидантов ан-
в материнском молоке, дневной и ночной. Cell
Membr. Free Rad. Res. 1 (3), 100-101.
Gossage CP, Deyhim M., Yamini S., Douglass LW, Mo-
ser-Veillon PB, 2002. Каротиноидный состав человеческого молока
человека в течение первого послеродового месяца и ответ
на Добавки с бета-каротином. Являюсь. J. Clin. Nutr.
76 (1), 193–197.
Konieczka P., Namieśnik J., Zygmunt B., 2004. Qual-
оценка качества и контроль качества аналитических результатов.
CDAiMŚ Press, Гданьск, Польша, 128-151.
Li W., Hosseinian F.S., Tsopmo A., Friel J.K., Beta T., 2009.
Оценка антиоксидантной способности и качества аромата грудного молока
. Питание 25 (1), 105-114.
Линдмарк-Манссон Х., Акессон Б., 2000. Антиоксидантные
факторов в молоке. Брит. J. Nutr.Дополнение 1, 103-110.
Lönnerdal B., 2000. Грудное молоко: действительно функциональная пища.
Питание 16 (7-8), 509-511.
Матос К., Моутинью К., Балкао В., Алмейда К., Рибейро М.,
Маркес А.Ф., Герра А., 2009. Общая антиоксидантная активность и количество микроэлементов в материнском молоке: первое 4 месяца
грудного вскармливания. Евро. Food Res. Technol. 230 (2),
201-208.
Пиччиано М.Ф., 2001. Питательный состав грудного молока.
Педиатр. Clin. North Am. 48 (1), 53-67.
Prior R.L., Wu X., Schaich K., 2005. Стандартизированные методы
для определения антиоксидантной способности и фенольных соединений
в пищевых продуктах и диетических добавках. J. Agric. Food Chem.
53, 4290-4302.
Sáenz A.T., Elisia I., Innis S.M., James K. Friel J.K., Kitts
D.D., 2009. Использование ORAC для оценки антиоксидантной способности
грудного молока. J. Food Comp. Анальный. 22 (7-8), 694-698.
Thaipong K., Boonprakob U., Crosby K., Cisneros-Zeval-
los L., Byrne HD, 2006. Сравнение анализов ABTS, DPPH,
FRAP и ORAC для оценки антиоксидантной активности. из экстрактов плодов гуавы. J. Food Comp. Анальный. 19,
669-675.
Туроли Д., Тестолин Г., Занини Р., Белле Р., 2004. Определение окислительного статуса грудного молока и молочных смесей.
Acta Pediatr. 93, 1569–1574.
Вандер Ягта Д.J., Okolob S.N., Costanza A., Blackwellc W.,
Glewa R.H., 2001. Содержание антиоксидантов в молоке
нигерийских женщин и сыворотки их
младенцев, вскармливаемых исключительно грудью. Nutr. Res. 21 (1), 121–128.
Зарбан А., Тахери Ф., Чахканди Т., Шарифзаде Г., Хора-
шадизаде М., 2009. Антиоксидант и улавливание радикалов-
активность человеческого молозива, переходного и зрелого молока
. J. Clin. Биохим. Nutr. 45 (2), 150-154.
PORWNANIE METODY ABTS ORAZ DPPH SŁUŻĄCYCH DO OKREŚLENIA CAŁKOWITEJ ZDOLNOŚCI
PRZECIWUTLENIAJĄCEJ MLEKA LUDZKIEGO
STRESZCZENIE
STRESZCZENIE
. Całkowitą zdolność przeciwutleniajca (TAC) mleka ludzkiego odzwierciedla zawartość i aktywność
w mleku składników, które zapobiegaj degradacji tłusziatlezów dłuszówek. Celem badania
było porównuje testu ABTS и DPPH w odniesieniu do odzysku, precyzji i czułości (granica wykrywalności
i oznaczalności) obu metod słuzanzcyk do gotości.
Materiał i metody. Wartości TAC zostały określone dla dwudziestu pięciu probek mleka uzyskanych od
zdrowych matek, mieszkanek Gdańska, w 14 dobie po porodzie.
Wyniki. Rednia wartość TAC mleka ludzkiego oznaczona testem ABTS wynosiła 19,61 ± 3,311 мг TE (rów-
noważniki Trolox) / 100 см
3
, średnia wartość uzyskana 9,95 мг TE см
3
.
Dla każdej badanej póbki mleka kobiecego poziom TAC określony metodą ABTS był wyższy niż wartości
oznaczone testem DPPH co ma prawdopodobnie związek Соединения с использованием автономного и онлайн-скринингового анализа HPLC
В этом исследовании изучалась антиоксидантная активность ста видов чистых химических соединений, обнаруженных в ряде природных веществ и восточных лекарственных трав (OMH).Для оценки антиоксидантной активности активности по улавливанию радикалов DPPH, активности по улавливанию радикалов ABTS и онлайн-скрининговых анализов HPLC-ABTS использовали три различных метода. Результаты показали, что 17 соединений проявляют лучшую ингибирующую активность против радикала ABTS, чем радикал DPPH. Определена скорость IC 50 для более практичного вещества, а в анализе ABTS IC 50 гидрат галловой кислоты, (+) — гидрат катехина, кофейная кислота, гидрат рутина, гиперозид, кверцетин и соединения кемпферола составили 1 .03 ± 0,25, 3,12 ± 0,51, 1,59 ± 0,06, 4,68 ± 1,24, 3,54 ± 0,39, 1,89 ± 0,33 и 3,70 ± 0,15 μ г / мл соответственно. Анализ ABTS более чувствителен к определению антиоксидантной активности, поскольку он имеет более быструю кинетику реакции и повышенный ответ на антиоксиданты. Кроме того, была очень небольшая погрешность между результатами автономного анализа ABTS и результатами онлайн-скринингового анализа HPLC-ABTS. Мы также оценили влияние 17 соединений на секрецию NO в RAW 264, стимулированном LPS.7 клеток, а также исследовали цитотоксичность 17 соединений с использованием набора для подсчета клеток (CCK), чтобы определить оптимальную концентрацию, которая обеспечит эффективное противовоспалительное действие с минимальной токсичностью. Эти результаты будут занесены в базу данных, и этот метод может стать мощным инструментом предварительного отбора для соединений, предназначенных для изучения на предмет их потенциальной биоактивности и антиоксидантной активности, связанной с их способностью улавливать радикалы.
Натуральные вещества и восточные лекарственные травы (OMH) традиционно применялись для лечения или профилактики различных заболеваний в Азии, включая Корею, Китай и Японию [1].Обычно OMH обладают очень эффективными противораковыми, противовоспалительными и антивирусными свойствами [2], и исследователи сообщают, что эти природные вещества также обладают антиоксидантной активностью. Кроме того, их долгая историческая клиническая практика и надежная терапевтическая эффективность делают их отличными источниками для открытия природных биоактивных соединений [3]. OMH получили широкое внимание из-за их использования в качестве лекарств, функциональных продуктов питания и косметических материалов [1, 4]. Растворитель для экстракции, состоящий из воды и этанола, обычно используется для извлечения биоактивных соединений из OMH с последующим кипячением и дистилляцией для получения полезных компонентов [5].Было показано, что химические компоненты OMH состоят из натуральных продуктов, включая тритерпены, стероиды, алкалоиды, флавоноиды и полисахариды [3, 6]. В ходе нашего исследования потенциальной антиоксидантной активности общеизвестного фитохимического вещества было идентифицировано сто видов чистых соединений. Активные формы кислорода (АФК), которые происходят из кислорода, естественным образом вырабатываются некоторыми ферментами как часть метаболизма в цитоплазме [7, 8]. Однако избыток АФК пагубно сказывается на кислородном отравлении и клеточной дисфункции.Кроме того, избыток АФК также связан с такими заболеваниями, как рак, инсульт, болезнь Паркинсона, болезнь сердца, артериосклероз, инфекции, старение и аутоиммунные заболевания [8, 9]. Для получения более убедительной информации было проведено множество исследований антиоксидантной активности, которая устраняет АФК [10, 11], и сообщалось, что OMH содержит такие виды антиоксидантов: ABTS, DPPH и ингибирование перекисного окисления липидов. Соответствующие целевые соединения использовались для определения антиоксидантной активности, особенно с использованием радикального метода DPPH или ABTS [12].Недавно были разработаны чувствительные онлайн-методы ВЭЖХ (онлайн-анализы HPLC-DPPH и онлайн-HPLC-ABTS) для анализа активности улавливания свободных радикалов [5, 13]. Была введена онлайн-система для быстрого определения антиоксидантной активности каждого компонента в данных соединениях, а также был разработан онлайн-скрининговый постколоночный анализ ВЭЖХ с использованием радикальных методов DPPH или ABTS, чтобы предоставить новый метод анализа скрининговых технологий, с помощью которого могут быть спектрофотометрический контроль по уменьшению оптической плотности при 515 или 734 нм [14].Этот новый метод был успешно применен для скрининга и определения естественной биоактивности сложных смесей, особенно для OMH [15]. В этом исследовании мы проводим анализы DPPH и ABTS для скрининга антиоксидантной активности ста видов чистых химических соединений, поэтому определяется показатель IC 50 для более практичного вещества. Мы также оценили цитотоксичность 17 соединений, включая (+) — гидрат катехина, каликозин, (3) кофейную кислоту, (4) куркумин, (5) эвгенол, (6) феруловую кислоту, (7) гидрат галловой кислоты, (8) ) гиперозид, (9) кемпферол, (10) магнолол, (11) кверцетин, (12) кверцетин-3-бета-D-глюкозид, (13) гидрат кверцитрина, (14) гидрат рутина, (15) синапиновая кислота, (16) ) ванилилацетон и (17) L — (+) — аскорбиновая кислота, используя анализ CCK для определения оптимальной концентрации, которая будет эффективной для противовоспалительной активности с минимальной токсичностью [9, 16].Кроме того, результаты онлайн-анализа HPLC-ABTS для некоторых соединений были сравнены и проанализированы, чтобы найти более практичный подход к использованию онлайн-скрининговых анализов HPLC-ABTS для быстрого определения пиков на хроматограммах, которые соответствуют биологически активным соединениям.
Сто видов чистых химических соединений были закуплены у KFDA (Корея), Daejung (Корея), Sigma (США), Chem Faces (Китай), TCI (Япония), ChromaDex (США), Fluka (США). , Wako (Япония), GlycoSyn (Новая Зеландия, США), Santa Cruz Biotech (США), China Lang Chem Inc.(Китай) и RD Chemical (США). Для анализов улавливания радикалов использовали следующие реагенты: ABTS (2,2′-азино-бис (3-этилбензотиазолин-6-сульфоновая кислота)), DPPH (2,2-дифенил-1-пикрилгидразил), персульфат калия и трифторуксусную кислоту (TFA) приобретали у Sigma (США). Метанол и ацетонитрил для ВЭЖХ были приобретены у J. T. Baker (США). Тройную дистиллированную воду фильтровали через мембранный фильтр 0,2 мкм (Advantec, Tokyo, Japan) перед анализом. Материалы для клеточных культур были получены от Lonza (Базель, Швейцария).ЛПС, бычий сывороточный альбумин (БСА) и 3- (4,5-диметилтиазол-2-ил) -2,5-дифенилтетразолий бромид (МТТ) были приобретены у Sigma (Сент-Луис, Миссури, США). Антитела для ELISA были получены от eBioscience (Сан-Диего, Калифорния, США). Химические структуры потенциально выбранных соединений показаны на Рисунке 1.
Стандартный образец высокой чистоты (более> 95%) был приготовлен путем растворения 2 мг каждого стандартного химического вещества в 20 мл метанола и доведения концентрации до 100 мкМ г / мл.
Метод катион-радикалов DPPH [17] был модифицирован для оценки эффекта улавливания свободных радикалов сотнями чистых химических соединений. Реагент DPPH представлял собой DPPH (8 мг), растворенный в MeOH (100 мл), для концентрации раствора 80 мкМ л / мл. Для определения поглощающей активности 100 мкл л реагента DPPH смешивали с 100 мкл л образца в 96-луночном микропланшете и инкубировали при комнатной температуре в течение 30 мин.После инкубации оптическую плотность измеряли при 514 нм с использованием ридера для ELISA (TECAN, Gröding, Австрия), и в качестве контроля использовали 100% метанол. Эффект поглощения DPPH измеряли с использованием следующей формулы: Значения IC 50 DPPH (концентрация образца, необходимая для ингибирования 50% радикалов DPPH) получали путем экстраполяции из регрессионного анализа. Антиоксидант оценивали на основе этого значения IC 50 .
Метод ABTS с катион-радикалами [17] был модифицирован для оценки эффекта улавливания свободных радикалов сотнями чистых химических соединений.Реагент ABTS был приготовлен путем смешивания 5 мл 7 мМ ABTS с 88 мкл л 140 мМ персульфата калия. Затем смесь выдерживали в темноте при комнатной температуре в течение 16 часов для образования свободных радикалов, а затем разбавляли водой (1:44, об. / Об.). Для определения поглощающей активности реагент ABTS 100 мкл л смешивали с 100 мкл л образца в 96-луночном микропланшете и инкубировали при комнатной температуре в течение 6 мин. После инкубации оптическую плотность измеряли при 734 нм с использованием ридера для ELISA (TECAN, Gröding, Австрия), и в качестве контроля использовали 100% метанол.Эффект поглощения ABTS измеряли с использованием следующей формулы: Значения IC 50 ABTS (концентрация образца, необходимая для ингибирования 50% радикалов ABTS) были получены путем экстраполяции из регрессионного анализа. Антиоксидантную активность оценивали на основании этого значения IC 50 .
Активность 100 видов чистых стандартных соединений по улавливанию радикалов в режиме онлайн определяли с помощью анализа ABTS, модифицирующего методы, используемые Stewart et al.[18]. Готовили 2 мМ маточный раствор ABTS, содержащий 3,5 мМ персульфат калия, который выдерживали в темноте при комнатной температуре в течение 16 часов, чтобы дать завершение генерации радикалов, а затем разбавляли водой (1:29, об. / Об.). Каждый чистый образец вводили в систему для ВЭЖХ Dionex Ultimate 3000 (Thromo Scientific). Хроматографические колонки, используемые в этом эксперименте, коммерчески доступны; это получено от RS-tech (0,46 × 25 см, 5 мкм м, C 18 , Тэджон, Корея).Объем впрыска составлял 10 мкл л, скорость потока подвижной фазы составляла 1,0 мл / мин. Длина волны УФ-детектора была фиксированной: 203, 254 и 320 нм. Состав подвижных фаз был следующим: А, вода / трифторуксусная кислота = 99,9 / 0,1, об.% И Б, ацетонитрил 100%. Продолжительность анализа составляла 70 мин, а программой растворителей был метод линейного градиента (90: 10–60: 40, A: B об.%). Фиг. 2 представляет собой схему, показывающую онлайн-соединение ВЭЖХ с DAD (детектор с диодной матрицей) и анализ ABTS в непрерывном потоке.Затем онлайн-ВЭЖХ пришла к Т-образному элементу, к которому был добавлен ABTS. Скорость потока ABTS составляла 0,5 мл / мин, подаваемая насосом Dionex Ultimate 3000. После перемешивания через петлю объемом 1 мл, которую поддерживали при 40 ° C, оптическую плотность измеряли детектором VIS при 734 нм. Данные были проанализированы с помощью программного обеспечения Chromeleon 7.
Клетки RAW 264.7 были получены из Американской коллекции типовых культур (ATCC, Манассас, Вирджиния, США) и выращены в среде RPMI 1640, содержащей 10% FBS и 100 ед / мл сульфата антибиотиков.Клетки инкубировали в увлажненной атмосфере с 5% CO 2 при 37 ° C. Для стимуляции клеток среду заменяли свежей средой RPMI 1640 и добавляли ЛПС (200 нг / мл) [18, 19] в присутствии или в отсутствие 17 соединений (1, 5 и 10 мкг мкг / мл). ) в течение 24 часов.
Цитотоксичность анализировали с использованием CCK (Dojindo, Япония). К клеткам добавляли 17 соединений и инкубировали в течение 24 часов при 37 ° C с 5% CO 2 . 10 мкл мкл растворов CCK добавляли в каждую лунку и клетки инкубировали еще в течение 1 часа.Затем оптическую плотность считывали при 450 нм с помощью ридера ELISA (Infinite M200, Tecan, Männedorf, Швейцария).
Продукция NO анализировалась путем измерения нитрита в супернатантах культивируемых клеток макрофагов. Клетки предварительно обрабатывали 17 соединениями и стимулировали LPS в течение 24 часов. Супернатант смешивали с таким же объемом реагента Грисса (1% сульфаниламида, 0,1% дигидрохлорида нафтилэтилендиамина и 2,5% фосфорной кислоты) и инкубировали при комнатной температуре (RT) в течение 5 мин [19].Считывали оптическую плотность при 570 нм.
Клетки высевали с плотностью 5 × 10 5 клеток / мл в 24-луночные культуральные планшеты и предварительно обрабатывали тремя концентрациями 17 соединений в течение 1 часа перед стимуляцией LPS. Планшеты для ELISA (Nunc, Roskilde, Дания) покрывали в течение ночи при 4 ° C улавливающим антителом, разведенным в буфере для покрытия (0,1 М карбонат, pH 9,5), а затем пять раз промывали фосфатно-солевым буфером (PBS), содержащим 0 мкл05% Tween 20. Сайты неспецифического связывания белков блокировали аналитическим буфером для разбавления (PBS, содержащий 10% FBS, pH 7,0) в течение более чем 1 часа. Вскоре в лунки добавляли образцы и стандарты. После инкубации в течение ночи при 4 ° C рабочий раствор детектора (биотинилированное детектирующее антитело и реагент стрептавидин-HRP) добавляли и инкубировали в течение 1 часа. Затем в лунки добавляли раствор субстрата (тетраметилбензидин) и инкубировали в течение 30 минут в темноте, после чего реакцию останавливали стоп-раствором (2 н. H 3 PO 4 ).Оптическая плотность считывалась при 450 нм [19].
Результаты выражены в виде среднего значения ± стандартное отклонение для количества (раз) экспериментов. Статистическую значимость сравнивали для каждой обработанной группы с контролем и определяли с помощью -тестов Стьюдента. Каждый эксперимент повторяли не менее трех раз для получения сопоставимых результатов. Значения с и считались значимыми.
Несколько исследований показали, что различные природные и химические соединения из натуральных веществ сельскохозяйственных культур, фруктов, овощей и восточных лекарственных трав (OMH) показали высокую антиоксидантную активность после процессов экстракции и очистки [3 ].Кроме того, были использованы различные методы для определения антиоксидантной активности натуральных веществ сельскохозяйственных культур, пищевых продуктов и растительных продуктов [1, 4]. В настоящем исследовании использовались три различных метода оценки антиоксидантной активности, включая активность по улавливанию радикалов DPPH, активность по улавливанию радикалов ABTS и онлайн-скрининговые анализы HPLC-ABTS. Таким образом, в этой работе впервые было задокументировано сравнение антиоксидантной активности ста видов чистых химических соединений.
Сообщается, что антиоксидантная активность влияет на различные виды биоактивности (отбеливание, противовоспалительное действие и высокое кровяное давление). Антиоксидантная активность природных веществ и OMH была широко изучена, и, таким образом, это исследование определяет антиоксидантную активность стандартных веществ, которые происходят из различных OMH, с точки зрения их активности по улавливанию радикалов DPPH и активности ABTS по улавливанию радикалов. Анализы улавливания радикалов DPPH и ABTS предлагают протонный ион с окислительно-восстановительной функцией для нестабильных свободных радикалов и играют решающую роль в стабилизации вредных свободных радикалов в организме человека.Обычно это достигается за счет использования того факта, что нестабильные фиолетовые свободные радикалы DPPH и ABTS превращаются в стабильные желтые свободные радикалы DPPH, принимая ион водорода из антиоксидантов. С точки зрения антиоксидантной активности оценивается способность устранять гидроксильные радикалы или супероксидные радикалы посредством физиологического действия или путем окисления, и высокий индекс указывает на сильную антиоксидантную активность. В таблице 1 представлены результаты улавливания радикалов DPPH и ABTS при 100 ppm для ста видов чистых стандартных соединений, использованных в этом исследовании.17 соединений среди ста видов чистых стандартных соединений ((+) — гидрат катехина, каликозин, (3) кофейная кислота, (4) куркумин, (5) эвгенол, (6) феруловая кислота, (7) гидрат галловой кислоты, (8) гиперозид, (9) кемпферол, (10) магнолол, (11) кверцетин, (12) кверцетин-3-бета-D-глюкозид, (13) кверцитрин, (14) гидрат рутина, (15) синапиновая кислота, ( 16) ванилилацетон и (17) L — (+) — аскорбиновая кислота) обладают антиоксидантной активностью более 90%. Таблица 2 показывает IC 50 для соединений с сильной антиоксидантной активностью.Метод измерения улавливания радикалов ABTS, который обычно используется для оценки антиоксидантной активности, использует тот факт, что свободные радикалы ABTS становятся стабильными, принимая ион водорода из антиоксиданта, теряя свой синий цвет. Более того, в анализе ABTS, а также в анализе DPPH, когда проявляется антиоксидантная активность, способность устранять гидроксильные радикалы или супероксидные радикалы посредством физиологического действия или окисления оценивается с высоким индексом, указывающим на сильную антиоксидантную активность.Каждый из DPPH и ABTS представляет собой соединения, которые имеют протонный свободный радикал с характеристическим поглощением, которое значительно уменьшается при воздействии акцепторов протонных радикалов. Известно, что улавливание радикалов DPPH и ABTS за счет антиоксидантной активности связано с их способностью отдавать водород (таблицы 1 и 2). Концентрация этих соединений, необходимая для подавления 50% эффекта улавливания радикалов (IC 50 ), была определена путем тестирования серии концентраций.В частности, наибольшую активность проявил образец с гидратом (+) — катехина, кофейной кислотой, эвгенолом, гидратом галловой кислоты, гиперозидом, кверцетином, ванилилацетоном и соединениями L — (+) — аскорбиновой кислоты. Кроме того, 17 соединений показали лучшую ингибирующую активность против радикала ABTS, чем радикалы DPPH. То есть анализ ABTS более чувствителен в определении антиоксидантной активности из-за более быстрой кинетики реакции, а его реакция на антиоксиданты выше. Следовательно, это исследование показывает, что в анализе ABTS IC 50 значения гидрата галловой кислоты, (+) — гидрата катехина, кофейной кислоты, гидрата рутина, гиперозида, кверцетина и кемпферола составляли 1.03 ± 0,25, 3,12 ± 0,51, 1,59 ± 0,06, 4,68 ± 1,24, 3,54 ± 0,39, 1,89 ± 0,33 и 3,70 ± 0,15 μ г / мл соответственно.
Самый популярный подход использует относительно стабильный окрашенный радикальный раствор DPPH или ABTS, который добавляется после колонки в поток ВЭЖХ. Лекарственные препараты, продукты питания, функциональные материалы, а также образцы растений и OMH оцениваются на предмет их антиоксидантной способности в соответствии с различными методами тестирования антиоксидантной активности, такими как методы ABTS [2,2′-азино-бис (3-этилбензотиазолин-6-сульфоновая кислота). кислота)] улавливание радикалов [20].ВЭЖХ анализирует реакцию постколонки с ABTS, и уменьшение определяется как отрицательный пик детектором поглощения VIS при 734 нм. Радикал ABTS намного более растворим в воде, чем DPPH [13], поэтому ABTS лучше показывает детали онлайн-системы анализа HPLC-ABTS, которая анализировала 17 данных соединений (рисунки 3 (a) и 3 (b)). Объединенные хроматограммы УФ (положительные сигналы) и гашения ABTS (отрицательные сигналы) 17 соединений (гидрат галловой кислоты: 5,46 мин, (+) — гидрат катехина: 9,26 мин, (3) кофейная кислота: 11.12 минут, (4) феруловая кислота: 15,87 минут, (5) гидрат рутина: 15,99 минут, (6) синапиновая кислота: 16,15 минут, (7) гиперозид: 16,49 минут, (8) кверцетин-3-бета-D-глюкозид: 16,82 мин, (9) ванилилацетон: 17,92 мин, (10) кверцитрин: 18,90 мин, (11) каликозин: 23,81 мин, (12) кверцетин: 24,31 мин, (13) кемпферол: 28,37 мин, (14) эвгенол: 28,98 мин , (15) куркумин: 40,20 мин, (16) магнолол: 43,98 мин, и (17) L — (+) — аскорбиновая кислота) (не обнаружено; L — (+) — аскорбиновая кислота) (каждая концентрация 100 м.д.) представлен на рисунке 3 (а).Из них семь соединений, показавших превосходную активность, были дополнительно проанализированы. В 7 соединениях было обнаружено несколько элюированных веществ, в том числе гидрат галловой кислоты (210 нм), (+) — гидрат катехина (210 нм), (3) кофейная кислота (320 нм), (4) гидрат рутина (210 нм), (5) гиперозид (210 нм), (6) кверцетин (210 нм) и (7) кемпферол (254 нм), которые наблюдаются как положительный сигнал на УФ-детекторе (210, 254 и 320 нм). Время удерживания () гидрата галловой кислоты (5,62 мин), (+) — гидрата катехина (9.46 мин), (3) кофейная кислота (11,12 мин), (4) гидрат рутина (15,86 мин), (5) гиперозид (16,26 мин), (6) кверцетин (23,58 мин) и (7) кемпферол (28,30 мин) ) представлены на Рисунке 3 (b). Другие соединения проявляли способность отдавать водород (отрицательный пик) по отношению к радикалу ABTS при применяемой концентрации. Таким образом, эти результаты показывают, что этот метод может быть применен для быстрого скрининга антиоксидантной активности или, точнее, активности по улавливанию радикалов (таблица 3). Эта работа подтверждает возможность оценки биологической активности конкретных фитохимических веществ с помощью онлайн-скринингового анализа HPLC-ABTS.Этот метод был успешно применен для скрининга и выявления антиоксидантной активности природных веществ и сложных смесей ОМГ [5, 15]. Результаты показывают форму хроматограммы по конкурентной адсорбции и десорбции. Кроме того, методы скрининга быстрой активности могут предоставить полезную информацию в фундаментальных исследованиях химии натуральных продуктов и анализе изоляции. Считается, что данные будут полезны только для инженерии, а также будут очень полезны в качестве функциональных материалов и фармацевтических материалов в коммерческих процессах.
3.3.1. Влияние 17 соединений на жизнеспособность клеток RAW 264.7Мы оценили цитотоксичность 17 соединений с использованием CCK для определения оптимальной концентрации, которая была бы эффективной для обеспечения противовоспалительной активности с минимальной токсичностью. Как показано на рисунке 4 (а), кемпферол, кверцетин и куркумин проявляют токсичность при концентрации 10 мкМ мкг / мл. Кроме того, кверцетин 3-бета-D-глюкозид обладает сильной токсичностью для жизнеспособности макрофагов при 5 мкМ мкг / мл или более.Ванилилацетон, гиперозид, гидрат галловой кислоты, синаповая кислота, гидрат рутина, феруловая кислота, (+) — гидрат катехина, аскорбиновая кислота, каликозин, кофейная кислота, магнолол, гидрат кверцитрина и эвгенол не влияли на жизнеспособность клеток до 10 μ г / мл, что указывает на то, что эти 13 соединений не токсичны для клеток. 3.3.2. Влияние 17 соединений на продукцию NO в стимулированном LPS RAW 264,7 МакрофагиМы оценили влияние 17 соединений на секрецию NO в RAW 264, стимулированном LPS.7 сот. Клетки предварительно обрабатывали 17 соединениями в концентрациях 1, 5 и 10 мкМ мкг / мл перед стимуляцией LPS, а также измеряли продукцию NO. В качестве положительного контроля мы использовали 10 мкл М дексаметазона, так как он широко используется в качестве противовоспалительного средства. Как показано на рисунке 4 (b), ванилилацетон, гидрат галловой кислоты, кемпферол, кверцетин, магнолол и куркумин проявляют сильное ингибирующее действие на секрецию NO при стимуляции LPS. Ингибирующее действие кемпферола, кверцетина и куркумина 10 мкл г / мл на продукцию NO было результатом их цитотоксичности.Однако кемпферол, кверцетин и куркумин оказывают эффективное ингибирование при концентрациях 1 и 5 мкМ мкг / мл. В частности, магнолол сильно ингибировал продукцию NO дозозависимым образом без токсичности. Гиперозид, синапиновая кислота, гидрат рутина, феруловая кислота, (+) — гидрат катехина, аскорбиновая кислота, каликозин, кофейная кислота, гидрат кверцитрина, эвгенол и кверцетин-3-бета-D-глюкозид не проявляют заметных подавляющих эффектов. 3.3.3. Влияние 17 соединений на продукцию воспалительных цитокинов, индуцированную LPSЗатем мы исследовали ингибирующее действие 17 соединений на продукцию воспалительных цитокинов, включая TNF- α , IL-6 и IL-1 β , которые являются другими параметрами воспаления.Гидрат галловой кислоты оказывает ингибирующее действие на продукцию цитокинов TNF- α во всех концентрациях дозозависимым образом. Кроме того, 5 мкМ мкг / мл кемпферола и 10 мкМ мкг / мл магнолола демонстрируют сильный ингибирующий эффект (рис. 5 (а)). Как показано на Фигуре 5 (b), ванилилацетон, гидрат галловой кислоты, кемпферол и кверцетин значительно ингибировали секрецию цитокина IL-6 статистически значимым дозозависимым образом. Кроме того, все соединения проявляли ингибирующий эффект на продукцию цитокинов IL-1 β .Гидрат галловой кислоты, кемпферол, кверцетин и магнолол были особенно сильными ингибиторами продукции цитокинов IL-1 β в зависимости от дозы (рис. 5 (c)). 4. ВыводыЭто исследование обеспечивает сравнение поглотителей свободных радикалов в сотне видов чистых химических соединений с помощью автономного анализа активности акцептора радикалов DPPH, анализа активности акцептора радикалов ABTS и онлайн-скрининга HPLC-ABTS проба. Здесь определяется норма более практичного вещества IC 50 .Результаты показывают, что в анализе ABTS IC 50 значения гидрата галловой кислоты, (+) — гидрата катехина, кофейной кислоты, гидрата рутина, гиперозида, кверцетина и кемпферола составляли 1,03 ± 0,25, 3,12 ± 0,51, 1,59 ± 0,06, 4.68 ± 1.24, 3.54 ± 0.39, 1.89 ± 0.33 и 3.70 ± 0.15 μ г / мл соответственно. Эта методология тестирования предоставила полезный инструмент для сосредоточения усилий на химически активных улавливающих радикалы соединениях с высокими кинетическими скоростями и позволила быстро собрать полезную информацию, относящуюся к молекулярным соединениям с точки зрения их потенциала антиоксидантной активности.Кроме того, была очень небольшая погрешность между результатами автономного анализа ABTS и результатами онлайн-скринингового анализа HPLC-ABTS. Мы также оценили влияние 17 соединений на секрецию NO в LPS-стимулированных клетках RAW 264.7 и цитотоксичность 17 соединений с использованием CCK, чтобы определить оптимальную концентрацию, которая будет эффективной для обеспечения противовоспалительной активности с минимальной токсичностью. Эти результаты будут скомпилированы в базу данных, и поэтому этот метод может быть мощным инструментом предварительного отбора для соединений, предназначенных для изучения на предмет их потенциальной биоактивности и антиоксидантной активности, связанной с их способностью улавливать радикалы. Конфликт интересовАвторы заявляют об отсутствии конфликта интересов в отношении публикации данной статьи. БлагодарностиЭто исследование было проведено в Центре приложений KM, KIOM. Авторы также благодарят за поддержку проекта «Исследование повышения эффективности лекарственных средств с использованием биоконверсии для лекарственных средств растительного происхождения» (K15280). Мэтт Абтс | Жемчужные барабаны -Официальный сайт-Последний раз выступавший на фестивале Bonarroo Music And Arts в 2013 году, барабанщик, номинированный на Грэмми в 2003 году, первый член Gov’t Mule, впервые начал заниматься музыкой в старшей школе.Он жил в Панаме, а затем переехал в Вирджинию, где провел следующие восемь лет, играя региональную музыку во многих, многих группах, прежде чем переехать во Флориду и получить перерыв, играя с Дики Беттсом и Чаком Ливеллом в 1984 году. Мэтт записал «Pattern Disruptive» с Дики. Betts Band в 1988 году, в которую также входили будущая когорта GM Уоррен Хейнс и клавишник X2 Джонни Нил. Мэтт переехал в Лос-Анджелес, Калифорния, где он, Уоррен и Аллен Вуди отыграли свой первый концерт в роли Gov’t Mule в 1994 году.GM записали пять альбомов и много гастролировали до августа 2000 года, когда неожиданно скончался басист Вуди. Мэтт Абтс и Уоррен Хейнс потеряли своего брата и музыкального партнера, но продолжили выпуск «Deep End» I & II и DVD «Deepest End» как дань уважения Аллену с участием более 20 самых громких имен басистов. когда-либо собранные игроки (включая Джона Энтвистла, Джека Брюса, Ларри Грэма, Альфонсо Джонсона и Фли) на двух записях и DVD-записи исторического живого выступления в Новом Орлеане в 2003 году.GM был номинирован на Грэмми за «Sco Mule», который был на «Deep End» I. В 2004 году, когда клавишник Дэнни Луис и бас-гитарист Энди Хесс уже в новом составе, GM выпускает «Deja Voodoo» и продолжает гастролировать в поддержку группы по стране и за рубежом до 2005 года. Time away from Gov’t Mule позволяет записывать и живые выступления в самых разных форматах. «X2» и «Deep Fried» (в обе группы входят Джонни Нил, а в DF — участники Джордж Портер-младший и Брайан Штольц) и Хук Эррера продолжали свою деятельность в прошлом году. 2006 22 августа — Выпуск диска High & Mighty от Gov’t Mule Награда барабанщику джем-бэнда 2006: Modern Drummer & Drum! Журнал Номинация на Грэмми 2003 — перформанс — Sco-Mule Премия Drummie 2002 — Барабанщик №1 R&B — Drum! Magazine 2004 Drummer Award — Барабанщик джем-бэнда № 1 — Drum! Magazine Неоднократно упоминался в журналах Modern Drummer and Drum! Журнал «Аэробный водный окислительно-восстановительный катализ с помощью разновидностей гидрида рутения и E», автор Ямин Хтет Ямин Хтет , Университет Клемсона РезюмеРеактивные формы кислорода (АФК), такие как супероксид и перекись водорода, классически считались монолитно вредными для биологических систем, ведущими только к болезням и дисфункциям.Это понимание эволюционировало недавно в свете новых открытий; 1) АФК необходимы для борьбы с инфекциями и 2) антиоксидантный фермент, каталаза, которая удаляет АФК (антиоксидантная активность), также может генерировать ROS (прооксидантную активность) в зависимости от идентичности соответствующих окисленных продуктов. Мы предполагаем, что комплекс, катализирующий окисление спиртов, может катализировать восстановление радикалов. В качестве катализатора аэробной водной окислительно-восстановительной реакции мы выбрали органо-рутениевый катализатор (Ru1), устойчивый на воздухе и растворимый в смешивающихся с водой растворителях, и моноанион радикала 2,2′-азино-бис (3-этилбензо-тиазолин-6-сульфонат). (ABTS — ) в качестве модели радикальных частиц из-за его сравнимого окислительного потенциала с ROS.Поскольку радикалы можно восстановить, используя спирты в качестве конечных восстановителей, мы выбрали биологически релевантные спирты, которые могут быть переработаны нашим организмом до их восстановленного состояния. Мы показали, что Ru1 катализирует восстановление ABTS — до его предшественника ABTS 2– в фосфатно-солевом буфере (pH 7,4). При этом Ru1 использовал в качестве концевых восстановителей биологически релевантные спирты, содержащие группы CH-OH, такие как NAD + , аминокислоты, сахара, метаболиты цикла лимонной кислоты.Механистические данные показывают, что каталитическое радикальное восстановление достигается за счет промежуточного продукта Ru-гидрида, образованного элиминированием 2-гидрида из субъединицы рибозы в NAD + и из разновидностей Ru-алкоксида в метаболитах циклов лимонной кислоты. Эти данные демонстрируют неоткрытую восстанавливающую способность биологических окислителей. Мы также раскрыли новую потенциальную терапевтическую стратегию с помощью Ru-катализаторов, которые используют тот же тип промежуточного Ru-гидрида, продемонстрировав каталитические антиоксидантные эффекты.В совокупности эти результаты иллюстрируют центральный принцип окислительно-восстановительной терапии: не идентичность самого окислительно-восстановительного катализатора определяет, производит ли он про- или антиоксидантные эффекты, а скорее идентичность и концентрации восстанавливаемых видов (конечный окислитель) и окисляемые частицы (конечный восстановитель). Тайские растения с высоким уровнем антиоксидантов, активностью улавливания свободных радикалов, антитирозиназной и антиколлагеназной активностью | BMC Дополнительная медицина и терапияСолнечное излучение является важным экологическим фактором повреждения кожи и может вызвать рак кожи [14].Ультрафиолетовое излучение вызывает провоспалительный ответ, деградацию внеклеточного матрикса и истощение антиоксидантов [15, 16]. УФ вызывает образование активных форм кислорода (АФК), которые вызывают гиперпигментацию и экспрессию коллагеназы [17, 18]. В нашем исследовании были изучены 14 тайских растений, экстрагированных тремя различными растворителями, на предмет их потенциала в качестве ингредиентов против морщин и отбеливания кожи. В этом исследовании мы использовали петролейный эфир, дихлорметан и этанол для экстракции растений с помощью аппарата Сокслета. Ардизия эллиптическая Тунб.имеет самый высокий выход в экстрактах петролейного эфира и этанола, тогда как Garcinia mangostana L. имеет самый высокий процентный выход при экстракции дихлорметаном. Эти растворители представляют собой серию органических растворителей с возрастающей полярностью. Различия в процентной урожайности зависели от вида растений и, вероятно, отражали различия в химическом составе растений. Фенолы — самая большая группа фитохимических веществ, обнаруженных в растениях, и они обладают различной биологической активностью у животных, включая человека [19].Общее содержание фенолов в растениях определяли методом Фолина-Чокальте. В целом фракция этанола имела самое высокое содержание фенола, за ней следовал дихлорметан, в то время как петролейный эфир с низкой полярностью имел самое низкое содержание фенола по сравнению с другими растворителями. В этом исследовании Ardisia elliptica Thunb. имел самое высокое содержание фенола во всех трех типах экстрактов. В предыдущих исследованиях дихлорметановые экстракты листьев Ardisia elliptica Thunb. имеют фенольное содержание 101 ± 1.3 мг ГАЭ на 1 г сухого растительного материала, что больше, чем его содержание в экстракте веточки [20]. Более того, метанольный экстракт спелых плодов Ardisia содержал 5,64 ± 0,37 г ГАЭ на 100 г экстракта [21]. Следовательно, листья и плоды Ardisia elliptica Thunb. имеют высокое содержание фенола, который легко экстрагируется метанолом, дихлорметаном и этанолом. Флавоноиды — это пигменты цветов, листьев, плодов и семян. Эти соединения являются вторичными метаболитами растений и широко распространены среди видов растений [22].Затем содержание флавоноидов в тайских растениях оценивали с помощью колориметрического анализа хлорида алюминия. Наши результаты показали, что наибольшее количество флавоноидов было обнаружено в этанольном экстракте из листьев Senna alata (L.) Roxb. В предыдущем исследовании высокое содержание флавоноидов было обнаружено в воде (4,25 мг QE на 100 г) и метанольных фракциях (3,97 мг QE на 100 г) Senna alata (L.) Roxb. [23]. Таким образом, препараты Senna alata (L.) Roxb имеют высокое содержание флавоноидов при экстракции растворителями с высокой полярностью, включая этанол, метанол и воду. Ардизия эллиптическая Тунб. имел самое высокое содержание флавоноидов во фракции дихлорметана. Плоды этого растения также имеют высокое содержание флавоноидов — 36,91 ± 2,37 мг QE на 1 г экстракта [24]. Следовательно, плоды и листья Ardisia elliptica Thunb. богаты флавоноидами. Общее содержание флавоноидов не коррелировало с общим содержанием фенолов. Однако флавоноиды обладают многими биологическими активностями, такими как защита от УФ-В [25], противовоспалительная [26], антигепатотоксическая [27] и противораковая [28]. Активность по улавливанию свободных радикалов с использованием анализа DPPH и ABTS. В анализе DPPH DPPH получает атом водорода от антиоксиданта [29]. Мы обнаружили, что этанольный экстракт Ardisia elliptica Thunb обладал самой высокой поглощающей способностью. Другие исследователи также сообщили, что дихлорметановые фракции Ardisia elliptica Thunb. листья и стебли обладают высокими уровнями антиоксидантной активности, как определено анализом DPPH, и, следовательно, это растение очень интересно для дальнейшего изучения в качестве лечебного средства [20].Экстракты из этанольной фракции с высокой полярностью явно показали лучшую антиоксидантную активность, чем фракции с более низкой полярностью, содержащие дихлорметан и петролейный эфир. Экстракты этанола содержали самые высокие уровни активности улавливания свободных радикалов по сравнению с другими экстрактами, и все экстракты этанола были активными. В анализе ABTS ABTS превращается в свой катион-радикал путем добавления персульфата калия. В присутствии антиоксиданта реактивный катион ABTS (или ABTS • + ) превращается в свою бесцветную природную форму [9].В соответствии с анализом DPPH, этанольные экстракты содержали самые высокие уровни акцепторной активности по сравнению с другими экстрактами. Опять же, самые высокие активности поглощения в экстрактах этанола, дихлорметана и петролейного эфира были получены из тех же растений, как показал анализ DPPH. Результаты анализов DPPH и ABTS, как и ожидалось, сильно коррелировали (рис. 1f). Однако общее содержание флавоноидов в растительных экстрактах не коррелировало с активностью акцептора свободных радикалов, обнаруженной с помощью анализа DPPH (рис.1c) или тестом ABTS (рис. 1e). Наши выводы об отсутствии существенной связи между содержанием флавоноидов и активностью поглотителей с использованием анализа ABTS согласуются с результатами других исследователей [30]. Напротив, общее содержание фенолов в растительном препарате положительно коррелировало с активностью поглотителя, измеренной обоими анализами (рис. 1b и d), что согласуется с предыдущим исследованием [31]. Примечательно, что поглощающая активность зависит от общего содержания фенола и растворителей с высокой полярностью, таких как этанол и дихлорметан.Эти результаты позволяют предположить, что содержание фенолов является основным компонентом с антиоксидантной активностью в 14 тайских растениях. Меланин, основной пигмент цвета кожи и волос, синтезируется меланоцитами в меланосомах. Избыточное производство и накопление меланина в коже может привести к пигментным нарушениям и эстетическим проблемам. Гиперпигментация возникает на участках кожи, подвергшихся воздействию солнечных лучей [32]. В меланогенезе тирозиназа является ключевым ферментом на лимитирующей стадии стадии, на которой L-тирозин гидроксилируется до L-DOPA, который далее окисляется до DOPAquinone.После этого он превращается в ДОФАхром, который является субстратом для синтеза меланина [3]. Было высказано предположение, что подавление активности тирозиназы отвечает за снижение выработки меланина. Разработка новых отбеливающих фитохимических соединений из натуральных продуктов в последнее время стала растущей тенденцией. Наши результаты показали, что этанольная фракция из Rhinacanthus nasutus (L.) Kurz была наиболее сильным ингибитором тирозиназы, за ней следовали этанольные экстракты из Ardisia elliptica Thunb.и Phyllanthus acidus (L.) Skeels. Очевидно, 7 растений из 14 растений имели высокое содержание фенолов, особенно Ardisia elliptica Thunb. и Annona squamosa L .. Кроме того, Senna alata (L.) Roxb. имеет самое высокое содержание флавоноидов, которые могут подавлять активность тирозиназы. Активные соединения растений, такие как арбутин, алоэзин, гентизиновая кислота, флавоноиды, гесперидин, солодка, ниацинамид, производные дрожжей и полифенолы, могут ингибировать меланогенез без цитотоксичности для меланоцитов [6]. Коллагеназа — это трансмембранная цинковая пептидаза, которая расщепляет связь X-Gly коллагена. Коллаген является обильным структурным белком и компонентом внеклеточного матрикса [33]. Уменьшение количества волокон коллагена и эластина увеличивается с возрастом и повреждением УФ-излучением, вызывающим появление морщин на коже [34]. Было предложено ингибирование коллагеназы для предотвращения старения кожи. Из тех, которые вызывают торможение в нашем исследовании, Ardisia elliptica Thunb. |